Gráfico de Levey-Jennings.

Gráfico de Westgard.

Gráfico de Lambert.

Gráfico de Student.

Gráfico de ISO.

Hidrantes.

Chuveiros.

Lava olhos.

Macacões impermeáveis.

Capelas de fluxo laminar.

Esterilização pelo calor úmido em autoclave.

Esterilização por gás de óxido de etileno.

Esterilização pelo calor seco em estufa.

Esterilização por radiação ionizante.

Utilização de desinfetantes.

Barreiras ambientais.

Barreiras primárias.

Barreiras obrigatórias.

Barreiras secundárias.

Barreiras de manipulação.

Botões interruptores de circuitos elétricos para paradas de emergência.

Canalizações contendo ácidos e face externa de polias e engrenagens.

Equipamento e aparelhos de proteção e combate ao incêndio.

Passarelas e corredores de circulação.

Canalizações de ar comprimido.

Ácido Nítrico.

Prata metálica.

Nitrato de prata.

Cloreto de cálcio.

Nitroprussiato de sódio.

Titulação de óxido-redução.

Titulação complexométrica.

Titulação potenciométrica.

Titulação etiloamônica.

Titulação ácido-base.

As centrífugas normalmente não geram calor durante o seu uso.

Podem ser utilizados na centrífuga quaisquer tubos, desde que a parte superior do mesmo não impeça o movimento do rotor.

O termo correto para descrever a força necessária para separar duas fases na centrífuga é campo centrífugo relativo.

As centrífugas podem ser refrigeradas ou não, sendo as primeiras indicadas para cidades que possuam temperaturas médias acima de 30°C, independentemente da amostra analisada.

O temporizador da centrífuga deve ser checado anualmente contra um temporizador de referência, que pode ser um cronômetro, não podendo apresentar mais do que 20% de erro.

A lâmpada empregada como fonte de radiação na espectrofotometria na região do ultravioleta é a de tungstênio.

A leitura de uma amostra deve ser realizada, preferencialmente, na cor não complementar, na região do visível.

Na realização da leitura de uma amostra na região do visível, quanto maior a transmitância, maior será o valor da absorbância.

Estão disponíveis apenas espectrofotômetros na configuração de feixe único, pois são capazes de compensar qualquer flutuação na potência radiante da fonte.

Para leituras na região do ultravioleta são necessárias cubetas de quartzo, enquanto que para a região do visível, pode-se empregar cubetas de vidro ou acrílico.

A condição de referência para esterilização de preparações aquosas é aquecimento de, no mínimo, 121°C por, pelo menos, 5 minutos.

Para a utilização desse método de esterilização, a condição de referência é uma temperatura mínima de 160°C por, pelo menos, 60 minutos.

O indicador biológico de escolha utilizado para validar e monitorar esse tipo de esterilização é a preparação de esporos Bacillus atrophaeus.

O indicador biológico mais adequado e descrito por compêndios que padronizam a utilização correta autoclaves, o Geobacillus stearothermophilus, deve ser avaliado no programa de validação do equipamento e na ocorrência de alguma alteração.

Os indicadores biológicos são utilizados preferencialmente para casos em que o autoclave sofreu alguma manutenção. Para equipamentos novos, não é necessário realizar esse tipo de validação, uma vez que o fabricante deve garantir a funcionalidade do equipamento.

Substâncias que porventura caiam no prato da balança devem ser removidas imediatamente, evitando possíveis danos ou avarias ao equipamento.

Os materiais a serem pesados devem, sempre que possível, ser colocados diretamente sobre o prato da balança, pois o uso de recipientes aumenta a chance de erro.

Durante a pesagem de materiais, a temperatura é um fator que não precisa ser levado em consideração, uma vez que esse fator não influencia no valor da massa.

Quando a balança não estiver em uso, suas portas deverão permanecer abertas para possibilitar a circulação de ar dentro do equipamento, evitando o aparecimento de fungos.

As partes móveis da balança e os pesos de referência devem ser manuseadas com as mãos sem uso de equipamentos de proteção individual sempre que for necessário a realização de uma limpeza periódica.

pH

pKa

pKb

[H ⁺ ]

pOH

Grupo de risco 0.

Grupo de risco 1.

Grupo de risco 2.

Grupo de risco 3.

Grupo de risco 4.

Branco.

Calibrador.

Padrão primário.

Solução reagente padrão.

Controle de qualidade interno.

O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um béquer.

Diluir 20 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em béquer.

Diluir 10 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em uma proveta.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

Diluir 10 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

A coleta de líquido cefalorraquidiano pode ser realizada por qualquer profissional de saúde de nível superior, por ser de simples execução.

Coleta de amostras de urina para cultura exigem limpeza da região genital, tanto para pacientes do sexo masculino como feminino, devendo ser coletado o primeiro jato da urina.

Durante a realização da coleta de sangue venoso, a alteração da sequência dos tubos de coleta à vácuo não acarreta interferência significativa nos resultados das análises laboratoriais.

As precauções universais sobre coleta de material biológico estabelecem que nem todo material biológico pode ser considerado potencialmente de risco, sendo um exemplo disso coleta de sangue de parentes de primeiro grau.

Na coleta de sangue venoso e/ou arterial, deve-se ter um conhecimento prévio sobre os aditivos e cor das tampas dos tubos de coleta à vácuo, uma vez que cada cor está associada a presença de um anticoagulante específico para determinada análise laboratorial.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.