Utilizar as objetivas de 100x com óleo de imersão; limpar as objetivas após o uso com tecido de boa qualidade e produtos próprios.

Sempre remover a lâmina do microscópio com a objetiva de maior aumento em posição centrada.

Ao guardar o microscópio, deixá-lo com a objetiva de pequeno aumento levantada e não centralizada

Pode-se usar óleo de imersão nas objetivas de 10x e 40x; limpar as objetivas com álcool.

Deve-se realizar a imersão completa e rápida da fita em amostra de urina homogeneizada.

Deve-se realizar a imersão completa e por tempo prolongado para uma melhor mistura das reações.

Deve-se eliminar o excesso de urina das bordas da fita após a sua imersão na amostra.

Deve-se aguardar o período de tempo específico para as reações acontecerem antes de se comparar a cor da reação com a tabela de cor do fabricante.

A corrida analítica é rejeitada.

O problema deve ser identificado e a ação corretiva deve ser implementada.

Nova corrida analítica deve ser reiniciada após a correção do problema.

Repetir o ensaio dos controles até eles atenderem as regras de controle de qualidade.

ser livre de microrganismos patogênicos e agentes tóxicos, sendo própria para o consumo humano.

ser livre de microrganismos e pirógenos.

conter uma quantidade mínima de contaminantes: íons, matéria orgânica e microrganismos.

ter origem natural e ser tratada com cloro.

é empregado para aumentar a pressão intravascular, o que facilita a palpação da veia, mas não deve permanecer mais que um minuto, pois pode ocorrer estase localizada, hemoconcentração e infiltração de sangue para os tecidos, alterando o resultado dos exames.

é empregado para aumentar a pressão intravascular, o que facilita a palpação da veia e o enchimento dos tubos, devendo permanecer em todo o período de coleta do sangue.

é empregado para aumentar a pressão intravascular, o que facilita a palpação da veia, mas não deve permanecer mais que 10 minutos após a coleta, pois pode ocorrer hemólise da amostra.

é empregado de forma prolongada para aumentar a pressão intravascular e a estase local, o que ajuda na hemoconcentração e nos resultados dos exames.

leucócitos agregados; para liberar as plaquetas e os leucócitos agregados, pode-se coletar nova amostra em EDTA e realizar o exame em até 6 horas.

agregados plaquetários; para liberar as plaquetas agregadas, pode-se aquecer a amostra a 45 ºC por 55 minutos e processá-la novamente.

leucócitos com plaquetas agregadas; para liberar as plaquetas agregadas, pode-se refazer o esfregaço após 24 horas da coleta.

agregados plaquetários; para liberar as plaquetas agregadas, pode-se aquecer a amostra a 37 ºC por dez minutos e homogeneizá-la por um minuto antes de processá-la novamente.

sem anticoagulante, volume de sangue coletado proporcional ao tamanho do tubo, sem hemólise e entregue no setor analítico em até quatro horas após a coleta.

com EDTA-K2, com homogeneização adequada, volume de sangue coletado proporcional ao tamanho do tubo, sem coágulo e hemólise e entregue no setor analítico até quatro horas após a coleta.

com heparina, com homogeneização adequada, volume de sangue coletado proporcional ao tamanho do tubo, sem coágulo e hemólise e entregue no setor analítico em até quatro horas após a coleta.

com EDTA-K2, com homogeneização adequada, volume de sangue coletado proporcional ao tamanho do tubo, presença de microcoágulos e discreta hemólise, e entregue no setor analítico em até 24 horas após a coleta.

Deve-se coletar primeiro o frasco para hemocultura, em segundo o tubo de citrato de sódio e por último o tubo com ativador de coágulo, com ou sem gel, para obtenção de soro.

Deve-se coletar primeiro o tubo com ativador de coágulo, com ou sem gel, para obtenção de soro, em segundo o frasco para hemocultura, por último o tubo de citrato de sódio.

Deve-se coletar primeiro o tubo com ativador de coágulo, com ou sem gel, para obtenção de soro, em segundo o frasco para hemocultura, por último o tubo de heparina.

Deve-se coletar primeiro o frasco para hemocultura, em segundo o tubo de EDTA e por último o tubo com ativador de coágulo, com ou sem gel, para obtenção de soro.

da cor, do aspecto e da gravidade específica.

da presença de sangue e de bilirrubina.

da proteína e do pH.

de cristais e de bactérias.

Amostras de fezes diarreicas frescas devem ser examinadas até 30 minutos após a coleta.

Amostras pastosas devem ser examinadas até 60 minutos após a coleta.

Amostras de fezes formadas podem ser examinadas no mesmo dia ou no dia seguinte à coleta.

Amostras de fezes formadas coletadas em conservantes como o MIF (mertiolate, iodo e formalina) devem ser examinadas no mesmo dia ou no dia seguinte à coleta.