Leia o caso a seguir.

Em uma situação de rotina para a realização de um VDRL, o profissional realizou o preparo da amostra por meio da centrifugação do tubo de coleta de tampa vermelha. Após a separação da amostra, o soro foi devidamente separado em um tubo de ensaio de vidro. Em seguida, separou-se outros 10 tubos de ensaio. No primeiro tubo (tubo 1), foi colocado 200 microlitros de soro do paciente. Nos tubos 2,3,4,5,6,7,8,9 e 10 foram colocados 100 microlitros de solução fisiológica. Em seguida, pipetou-se 100 microlitros do conteúdo do tubo 1 para o tubo 2. Procedeu-se a homogeneização no tubo 2, e, pipetouse 100 microlitros do conteúdo do tubo 2 para o tubo 3. Em seguida, homogeneizou-se o conteúdo do tubo 3 e pipetou-se 100 microlitros do conteúdo do tubo 3 para o tubo 4, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 4 para o tubo 5, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 5 para o tubo 6, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 6 para o tubo 7, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 7 para o tubo 8, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 8 para o tubo 9, seguido da homogeneização e transferência de 100 microlitros do conteúdo do tubo 9 para o tubo 10. Após a realização desse preparo, pegou-se a placa de Kline (escavada). No primeiro poço da placa, pipetou-se 50 microlitros do tubo 1, no segundo poço, 50 microlitros do tubo 2, no terceiro poço, 50 microlitros do tubo 3, no quarto poço, 50 microlitros do tubo 4, no quinto poço, 50 microlitros do tubo 5, no sexto poço, 50 microlitros do tubo 6, no sétimo poço, 50 microlitros do tubo 7, no oitavo poço, 50 microlitros do tubo 8, no nono poço, 50 microlitros do tubo 9, no décimo poço, 50 microlitros do tubo 10, no décimo primeiro poço, 50 microlitros do reagente controle negativo e, no décimo segundo poço, 50 microlitros do reagente controle positivo. Terminado esse processo, foram colocados 20 microlitros de suspensão antigênica nos poços de 1 a 12 (em todos os poços relatados anteriormente). Em seguida, a placa de Kline foi colocada em um agitador mecânico a 180 rpm por 4 minutos, sendo, por fim, levada para análise em microscopia (aumento de 100x). Foram observadas aglutinações nos poços 5,6,7,8 e 12.  

Leia o caso clínico a seguir.

J.S.R., sexo feminino, 40 anos de idade, procura o laboratório com visível sinal de icterícia, sem dores abdominais ou febre. O pedido de realização de exames era para EAS; EPF; Hemograma; Enzimas hepáticas; Bilirrubina total e frações; e Marcadores virais para hepatites A, B e C. No dia seguinte, a paciente entrega os materiais de fezes e urina no laboratório e segue para a realização da punção venosa. As fezes apresentavam aspecto esbranquiçado (acólicas) e a urina escura, com formação de espuma amarelada ao movimento de homogeneização. Na parte química do EAS, foi reportado bilirrubina na urina. No hemograma, J.S.R. apresentou hemoglobina de 13,5 g/dL. Hematócrito de 40% e 4,2 milhões de hemácias por microlitro. VCM de 95 fl, HCM 32,14 pg e CHCM 33,75%. Os leucócitos estavam com 5.600 células por microlitro, 48% deles neutrófilos, 36% linfócitos, 10% monócitos, 5% eosinófilos e 1% de basófilos. As plaquetas estavam em 320.000 por microlitro. Na análise microscópica do hemograma não foi relatada presença de bastões, células jovens ou eritroblastos. Os marcadores hepáticos e virais estão apresentados na tabela abaixo.

Testes realizados, resultados e valores de referência das enzimas hepáticas, bilirrubina total e frações e marcadores virais para hepatites A, B e C. 

Leia o caso clínico a seguir.

Para a realização de uma tipagem sanguínea, foi adotado o método de tipagem em tubo seguido da confirmação com a tipagem reversa. A amostra, em tubo de EDTA, foi submetida a centrifugação e, em seguida, foi separado o plasma em um tubo de ensaio à parte. Uma alíquota da papa de hemácias foi pipetada em outro tubo de ensaio e foi diluída em 5% com solução fisiológica (T5%). Em seguida, foram preparados 5 tubos de ensaio. Nos três primeiros tubos, destinados à prova direta, foi feita a identificação do primeiro tubo como A, o segundo, B e o terceiro, D. No primeiro tubo foi colocado 100 microlitros da amostra T5% e duas gotas de reagente anti-A. No segundo tubo, 100 microlitros de T5% e duas gotas de reagente anti-B e no terceiro tubo, 100 microlitros de T5% e duas gotas de reagente anti-D. Em seguida, foi realizada a centrifugação dos tubos a 1.200 rpm com 1 minuto e feita a leitura. Não foi observada aglutinação nos tubos A e B, apenas no tubo D foi observada aglutinação de hemácias. Em seguida, encaminhou-se a realização da confirmação por prova reversa. Para isso, os outros dois tubos de ensaio foram identificados, o primeiro como RA e o segundo, como RB. No primeiro tubo, RA, foram pipetados 100 microlitros do plasma da amostra teste (TP) e duas gotas do reagente para prova reversa A (hemácias tipo A purificadas) e, no segundo tubo, RB, 100 microlitros de TP e duas gotas do reagente para prova reversa B (hemácias tipo B purificadas). Em seguida, os dois tubos foram encaminhados para a centrifugação a 1.200 rpm por 1 minuto e feita a leitura. Não foi observada aglutinação de hemácias nem no tubo RA nem no tubo RB.

Leia o caso clínico a seguir.

Em um atendimento prestado por um laboratório de análises clínicas a um cliente ambulatorial foi observado a seguinte situação. O referido cliente tinha uma solicitação de hemograma, dosagem de glicemia em jejum, lipidograma, EAS e EPF. Um dia depois, o cliente volta ao laboratório, às oito horas da manhã. Ao ser questionado sob as condições da amostra de urina, ele refere que colheu a primeira amostra da manhã, às 07h30 e que a amostra de fezes foi colhida logo em seguida à amostra de urina, pouco antes de vir ao laboratório. Quanto ao horário da última refeição, foi registrado que o cliente tivera sua última refeição às 19h30 do dia anterior. O paciente foi convidado a adentrar a sala de coleta às 08h30. Para a coleta de sangue, foram separados 3 tubos, um tubo de EDTA e 2 tubos sem anticoagulante com ativador de coágulo (tampa vermelha). A coleta foi realizada utilizando o sistema a vácuo. Inicialmente, foi feita a antissepsia do local de coleta, seguido da aplicação do garrote (torniquete). Levou-se cerca de 45 segundos para a visualização e puncionamento da veia, tempo esse em que o membro permaneceu garroteado. Havendo o puncionamento, o garrote foi retirado e foram conectados, em sequência, os tubos para o soro e, por fim, o tubo de EDTA. Terminado o processo, as amostras foram encaminhadas para as respectivas seções de trabalho onde, às 14h, foram centrifugadas (quando for o caso) e analisadas.