A lâmpada empregada como fonte de radiação na espectrofotometria na região do ultravioleta é a de tungstênio.

A leitura de uma amostra deve ser realizada, preferencialmente, na cor não complementar, na região do visível.

Na realização da leitura de uma amostra na região do visível, quanto maior a transmitância, maior será o valor da absorbância.

Estão disponíveis apenas espectrofotômetros na configuração de feixe único, pois são capazes de compensar qualquer flutuação na potência radiante da fonte.

Para leituras na região do ultravioleta são necessárias cubetas de quartzo, enquanto que para a região do visível, pode-se empregar cubetas de vidro ou acrílico.

A condição de referência para esterilização de preparações aquosas é aquecimento de, no mínimo, 121°C por, pelo menos, 5 minutos.

Para a utilização desse método de esterilização, a condição de referência é uma temperatura mínima de 160°C por, pelo menos, 60 minutos.

O indicador biológico de escolha utilizado para validar e monitorar esse tipo de esterilização é a preparação de esporos Bacillus atrophaeus.

O indicador biológico mais adequado e descrito por compêndios que padronizam a utilização correta autoclaves, o Geobacillus stearothermophilus, deve ser avaliado no programa de validação do equipamento e na ocorrência de alguma alteração.

Os indicadores biológicos são utilizados preferencialmente para casos em que o autoclave sofreu alguma manutenção. Para equipamentos novos, não é necessário realizar esse tipo de validação, uma vez que o fabricante deve garantir a funcionalidade do equipamento.

Substâncias que porventura caiam no prato da balança devem ser removidas imediatamente, evitando possíveis danos ou avarias ao equipamento.

Os materiais a serem pesados devem, sempre que possível, ser colocados diretamente sobre o prato da balança, pois o uso de recipientes aumenta a chance de erro.

Durante a pesagem de materiais, a temperatura é um fator que não precisa ser levado em consideração, uma vez que esse fator não influencia no valor da massa.

Quando a balança não estiver em uso, suas portas deverão permanecer abertas para possibilitar a circulação de ar dentro do equipamento, evitando o aparecimento de fungos.

As partes móveis da balança e os pesos de referência devem ser manuseadas com as mãos sem uso de equipamentos de proteção individual sempre que for necessário a realização de uma limpeza periódica.

pH

pKa

pKb

[H ⁺ ]

pOH

Grupo de risco 0.

Grupo de risco 1.

Grupo de risco 2.

Grupo de risco 3.

Grupo de risco 4.

Branco.

Calibrador.

Padrão primário.

Solução reagente padrão.

Controle de qualidade interno.

O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um béquer.

Diluir 20 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em béquer.

Diluir 10 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em uma proveta.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

Diluir 10 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

A coleta de líquido cefalorraquidiano pode ser realizada por qualquer profissional de saúde de nível superior, por ser de simples execução.

Coleta de amostras de urina para cultura exigem limpeza da região genital, tanto para pacientes do sexo masculino como feminino, devendo ser coletado o primeiro jato da urina.

Durante a realização da coleta de sangue venoso, a alteração da sequência dos tubos de coleta à vácuo não acarreta interferência significativa nos resultados das análises laboratoriais.

As precauções universais sobre coleta de material biológico estabelecem que nem todo material biológico pode ser considerado potencialmente de risco, sendo um exemplo disso coleta de sangue de parentes de primeiro grau.

Na coleta de sangue venoso e/ou arterial, deve-se ter um conhecimento prévio sobre os aditivos e cor das tampas dos tubos de coleta à vácuo, uma vez que cada cor está associada a presença de um anticoagulante específico para determinada análise laboratorial.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.

Os servidores da Unioeste, admitidos através de teste seletivo não participam do processo de consulta acadêmica para escolha do Reitor e Vice-Reitor, devido seu vínculo de caráter temporário.

O Hospital Universitário é Regimentalmente caracterizado como órgão suplementar vinculado à Reitoria.

A Unioeste é uma Universidade multicampi, com centros de excelência na produção e socialização do conhecimento, atenta às características regionais.

O Conselho Universitário (COU) é o órgão máximo normativo e deliberativo da administração superior.

Compõem a estrutura da Universidade os campi de Cascavel, Foz do Iguaçu, Francisco Beltrão, Marechal Cândido Rondon e Toledo, todos de igual hierarquia e vinculados a administração superior.

O paciente deve sempre ser orientado a manter-se em jejum mínimo de 12 horas antes da realização de quaisquer exames laboratoriais.

Para a coleta de urina para os exames de parcial de urina e urocultura, o paciente deve ser aconselhado a colher o primeiro jato de urina afim de aumentar a sensibilidade para visualização e/ou isolamento de microrganismos patológicos.

O uso de garrote ou torniquete é obrigatório para os procedimentos de venopunção, pois melhora a visualização e a seleção do vaso sanguíneo para a procedimento de coleta.

O uso continuado e prolongado de garrote ou torniquete não apresenta evidências de interferir no resultado de exames laboratoriais.

Para coleta de urina de 24 horas deve-se orientar o paciente a iniciar o processo descartando a primeira urina da manhã, e seguir coletando todas as demais micções até o próximo dia no mesmo horário iniciado, porém coletando-se a primeira urina da manhã do dia seguinte, mantendo todo o material sob refrigeração até sua entrega ao laboratório clínico.

A coloração negativa com Tinta da China permite a visualização de estruturas leveduriformes encapsuladas.

O teste de VDRL é um teste imunológico de microfloculação auxiliar no diagnóstico de sífilis, em que o tempo e temperatura ambiente devem ser controlados durante sua execução.

Equipamentos automatizados de laboratório devem ser calibrados diariamente afim de garantir a obtenção de resultados minimante confiáveis.

Amostras de soro para dosagem de bilirrubina devem ser protegidas da luz ambiente afim de evitar resultados falsamente diminuídos.

Frascos e recipientes utilizados em análises microbiológicas devem ser rigorosamente limpos, desengordurados e estéreis.

A coloração com azul de cresil brilhante é amplamente empregada para caracterização diferencial de leucócitos em sangue periférico.

O esfregaço sanguíneo, utilizado especialmente para a leucometria diferencial e avaliação geral da série vermelha e plaquetas, deve ser executado de forma rápida, com secagem ao ar quente e leitura na parte espessa do esfregaço.

O anticoagulante EDTA deve ser evitado para a análise do hemograma pois induz a agregação plaquetária e distorções na estrutura de eritrócitos.

Colorações de Wright, May-Grunwald, Giemsa e Leishman são utilizadas, geralmente em associação, para a coloração de esfregaços sanguíneos, fornecendo uma adequada caracterização de estruturas leucocitárias que permite sua distinção e diferenciação.

Os reticulócitos podem ser contados em esfregaços de sangue periférico corados pela técnica de MayGrunwald-Giemsa.

Equívocos na fase pré-analítica – dentre os quais pedidos incompletos de exames, falta de orientação ao paciente, coleta insuficiente ou em tubos inadequados, transporte inadequado e centrifugação em tempo insuficiente – são responsáveis pela maior parte dos erros laboratoriais.

A monitorização dos processos de análise através do Controle Interno e Externo de Qualidade consistem em importantes ferramentas para executar com maior eficiência e minimizar erros da fase analítica.

A preparação de laudos, impressão ou transmissão dos laudos e sua interpretação representam etapas da fase pós-analítica.

A icterícia, caracterizada pelo aumento de lipídeos plasmáticos, pode ter sua interferência minimizada na dosagem de bilirrubina através da proteção da exposição a luz.

A hemólise é um interferente bastante crítico em laboratório, capaz de alterar potencialmente o resultado de ensaios como dosagem de potássio, lactato-desidrogenase (LDH) e aspartato-amino-transferase (AST).

Deve-se coletar a amostra em tubo com anticoagulante EDTA e executar os testes imediatamente

Deve-se proceder a coleta em tubo com anticoagulante citrato de sódio, com atenção rigorosa ao volume indicado no tubo.

Deve-se proceder a coleta em tubo com heparina com atenção ao volume de amostra que pode variar no máximo em 10% para mais ou para menos do indicado no tubo.

Deve-se utilizar o tubo de citrato de sódio para o exame de TAP, EDTA para TTPA e heparina para o Fibrinogênio.

A coleta deve ser rápida aplicando-se o garrote durante todo o processo.

São utilizados os reagentes cristal de violeta, lugol, álcool-cetona e fucsina básica, nesta ordem.

O lugol é utilizado como mordente, formando um complexo com o corante, insolúvel em água, que se fixa a parede celular das bactérias.

A fucsina básica serve como corante primário, se complexa com o iodo e dá a cor característica das bactérias Gram positivas.

A etapa de descoloração com solvente orgânico álcool-cetona é crítica, já que o prolongamento da exposição pode provocar a descoloração até mesmo dos microrganismos Gram positivos, gerando a visualização falsa de Gram negativo.

Pode-se distinguir as bactérias que adquirem coloração rosada (Gram negativas) e as de coloração púrpura (Gram positivas).

A Pipeta Graduada é utilizada para medir precisamente volumes variáveis.

A Pipeta Volumétrica é utilizada para medir precisamente volumes fixos.

As vidrarias para medições precisas de volumes não devem ser aquecidas.

O Becker é uma vidraria de uso geral em laboratório, utilizado para execução de reações e mensuração precisa de volumes.

O tubo de ensaio pode ser empregado para a execução de reações laboratoriais e pode ser aquecido diretamente sobre a chama do Bico de Bunsen.