Só tocar nas lentes quando estas estiverem sujas, limpando-as com algodão ou com pano.

Nunca forçar o microscópio. Todas as conecções devem funcionar suavemente.

Quando o microscópio não estiver em uso, não deverá ser guardado coberto ou em sua caixa, para evitar fungos ou mofo nas lentes.

Limpar sempre a objetiva de imersão após o uso, com álcool 70%.

Deixar a fonte de luz acesa quando não estiver utilizando o microscópio, para evitar o acende e apaga, que pode queimar a lâmpada.

As gaiolas utilizadas na experimentação com animais convencionais de laboratório tendem a manter dimensões padronizadas. Contudo, os tamanhos das caixas e o número máximo de indivíduos por caixa não têm padrões pré-estabelecidos.

As gaiolas utilizadas na experimentação com animais de laboratório podem ser providas de filtros que visam proteger os humanos dos animais imunodeficientes.

No hamster, assim como em camundongos e ratos, injeções subcutâneas são realizadas na região ventro-lateral, na altura do quadril, ou na região das patas.

O animal de laboratório deve ser visto como um reagente biológico. Tudo o que o circunda, de uma ou outra forma, pode exercer influência nas características desse reagente.

A maioria dos roedores possui cauda, porém esta não deve ser utilizada para suspender o animal, para a contenção, evitando o desconforto desses pequenos mamíferos.

Os vírus são considerados acelulares e, por isso não são estudados na microbiologia.

Bactérias podem ser usadas para reduplicar DNA na forma de um plasmídeo. Esse DNA é frequentemente modificado quimicamente in vitro e então inserido em outros organismos.

Um gene repórter é usado para levar a informação genética de bactérias do tipo Archaea para Eubactérias.

Bactérias podem ser usadas para a produção de grandes quantidades de organelas celulares, que podem ser inseridas em células danificadas.

O sistema de hibridação em levedura combina genes de levedura diferentes e os insere em bactérias anaeróbicas, para estudar interações proteicas em um ambiente celular.

Base, Platina, Charriot, Canhão, Parafuso macro e micrométrico

Revolver, Platina, Objetiva, Metralhadora, Parafuso macro e micrométrico

Condensador, Platina, diafragma, Canhão, fonte de calor, Corante

Ocular, Charriot, Mira, Parafuso locomotor das lentes oculares

Parafuso micrométrico, Base, Platina, botão selector de coloração

Apenas os procedimentos 1, 3, 4, 5, 6 e 8.

Apenas os procedimentos 1, 3, 5, 6, 8 e 10.

Apenas os procedimentos 1, 2, 3, 5, 6, 8 e 10.

Apenas os procedimentos 1, 3, 4, 5, 6, 8 e 9.

Os procedimentos 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 e 10.

Amebíase, Tripanosomíase, Leishmaniose, Malária e Balantidiose

Ascaridíase Estrongiloidíase, Tripanosomíase, Tricocefalose, Pediculose, Miíase e Acaríase

Balantidiose, Malária, Toxoplasmose, Cisticercose e Teniase

Giardíase, Tricomoníase, Toxoplasmose, Esquistossomose e Cisticercose

Hidatidose, Ftiríase, Equinococose, Enterobiose, Filariose, Ancilostomose e Necatoriose

É correta apenas a afirmativa 1.

É correta apenas a afirmativa 2.

São corretas apenas as afirmativas 1 e 3.

São corretas apenas as afirmativas 2 e 3.

São corretas as afirmativas 1, 2 e 3.

usar 5 mL da solução disponível e adicionar mais 15 mililitros de água destilada.

adicionar 20 mg de NaCl na solução já disponível.

usar 80 mL da solução disponível e reduzir o volume de água à metade, pela evaporação.

adicionar 250 mL de água destilada à solução.

adicionar 500 mL de água destilada à solução.

balança analítica de precisão ± 0,0001 g, espátula, pipeta volumétrica de 100 mL, vareta de vidro, funil, 1 erlenmayer de 1 litro, pHmetro e CuSO₄.

balança analítica de precisão ± 0,01 g, espátula, água deionizada, 2 balões volumétricos de 50 mL, pipeta volumétrica de 25 mL, proveta de 25 mL, vareta de vidro, funil e CuSO₄.

balança analítica de precisão ± 0,1 g, colher, proveta de 25 mL, 3 balões volumétricos de 100 mL, proveta de 5 mL, vareta de vidro, 200 mL de álcool etílico 99°, funil, pHmetro, condensador e CuSO₄.

balança analítica de precisão ± 0,1 g, espátula, pipeta volumétrica de 100 mL, vareta de vidro, funil, espectrofotômetro,1 erlenmayer de 1 litro, 1 decantador e CuSO₄.

balança analítica de precisão ± 1 g, espátula, 3 balões volumétricos de 10 mL, vareta de vidro, funil, 200 mL de álcool etílico 99º, espectrofotômetro e CuSO₄.

Luvas e avental.

Lava-olhos e avental.

Chuveiro de emergência e luvas.

Avental e chuveiro de emergência.

Chuveiro de emergência e lava-olhos.

Código centígrado.

Código de cores.

Codificação morse.

Identidade odorante.

Identidade odorante.

Prumo

Leitura

Legenda

Menisco

Mensurado

Crescem aleatoriamente.

Crescem de baixo para cima.

Crescem de cima para baixo.

Crescem em escala logarítmica.

Decrescem em escala exponencial.

Tara.

Fração.

Pêndulo.

Higróstato.

Hidrômetro.

Pisseta

Proveta

Pipeta volumétrica

Cadinho de metal

Tubo de ensaio

Litros por segundo de turbidez (L/s T).

Unidade nefelométrica de turbidez (NTU).

Miligramas por litro de turbidez (mg/L T).

Partes por milhão de turbidez (ppm T).

Metros cúbicos por segundo de turbidez (m³/s T).

Não beba e não coma no laboratório.

Identificação correta dos reagentes e soluções.

Substância inflamável deve ser manipulada em local próximo de fonte de aquecimento.

Derramamentos de líquidos e sólidos deverão ser limpos imediatamente.

Ao manipular qualquer reagente deve-se ter conhecimento de suas características com relação à toxicidade, inflamabilidade e explosividade.

Fonte de calor.

Dado estatístico.

Controle de entrada de amostra.

Registro de controle operacional.

Controle de saída de estoque.

Funil

Cadinho

Vidro de relógio

Balão volumétrico

Cápsula de porcelana

Pisseta

Microscópio

Banho-maria

Erlenmeyer

Placa Petri