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Não reduzem nitrato a nitrito, mas fermentam a glicose com ou sem produção de gás.

Não crescem em meios básicos (caldo peptona) e meios seletivos (Mac Conkey, EMB - Eosin Methylene Blue Agar).

São bacilos esporulados, com motilidade variável, oxidase e catalase positivos.

São anaeróbios facultativos (crescem em aerobiose e anaerobiose), mas não fermentam a glicose.

O Meio IAL (Instituto Adolfo Lutz) foi elaborado para triagem de enterobactérias e consiste de 9 provas em apenas um tubo de ensaio: indol (tampa), fermentação da sacarose e glicose e produção de gás, fenilalanina, ureia, H2S, lisina e motilidade.

Não são analitos que podem sofrer interferência pela hemólise: glicose, albumina e sódio.

Podem ocorrer contagens falsamente baixas de plaquetas, devido a coagulação parcial da amostra, à agregação ou ao satelitismo plaquetário.

A lipemia pode interferir nos exames em que o princípio metodológico é a turbidimetria, podendo produzir resultados falsamente baixos.

A presença de agregados de plaquetas pode levar a uma falsa diminuição na contagem de leucócitos.

A má conservação da amostra ou a presença de agregação leucocitária por anticorpos pode resultar em uma contagem falsamente alta de leucócitos.

Heparina

Citrato de sódio

Fluoreto de sódio

Oxalato de potássio

Ácido etilenodiamino tetra-acético (EDTA)

São corretas apenas as afirmativas 2 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 4 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 1, 4 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2, 3 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 2, 3, 4 e 5.

O Método de Hoffman, Pons e Janer é um método que detecta larvas vivas, através de hidrotropismo e termotropismo positivo.

O Método de Faust consiste na centrífugo-flutuação em sulfato de zinco.

O Método de Baermann-Moraes não deve ser utilizado para detectar larvas de Strongyloides stercoralis.

A coleta de 3 amostras de fezes para exame parasitológico é sugerida quando o quadro de diarreia é superior a 7 dias em pacientes imunocompetentes.

A cultura de fezes realizada de rotina não prevê testes para Shigella, Salmonella e Campylobacter.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 3.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 1, 4 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 2, 3 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 3, 4 e 5.

A técnica mais utilizada para semeadura em placa é a técnica de esgotamento, cujo objetivo é o agrupamento de colônias.

Na semeadura, a amostra estriada sobre toda a superfície do ágar em placa dificulta a contagem de colônias.

As placas de meio de cultura semeadas devem ser incubadas por 12 horas em estufa bacteriológica, e se não houver crescimento visível de colônias bacterianas, a incubação pode ser prolongada por apenas mais 24 horas.

A semeadura de quantidade conhecida da amostra com alça calibrada permite fazer a quantificação das bactérias no material.

A observação das características da colônia que se desenvolveu na placa dificilmente permite a identificação do grupo bacteriano.

No método de Gram são utilizados os corantes Cristal de violeta, Lugol e Fucsina diluída.

No método de Gram os organismos gram-positivos fixam a fucsina e por isso se apresentam na cor roxo-escura.

No método de Gram os organismos gram-negativos retêm o complexo cristal violeta-lugol e por isso se apresentam na cor vermelha.

A última etapa da coloração de Ziehl-Neelsen é cobrir a superfície da lâmina com a solução de carbolfucsina (fucsina fenicada).

Na coloração de Ziehl-Neelsen, após descorar o esfregaço com solução de álcool – ácido a 3%, não se deve lavar a lâmina antes da adição do corante de contraste (azul de metileno).

O exame “a fresco” não permite avaliar a presença de estruturas microbianas com características peculiares e que, em geral, apresentam tamanho suficiente para serem visualizadas sem coloração.

A maioria das estruturas bacterianas é de fácil visualização e diferenciação no exame “a fresco”, não precisando ser submetida a processo de coloração.

No exame direto após coloração, os problemas de interpretação geralmente resultam de má preparação do esfregaço: finos ou espessos, de aquecimento da lâmina e descoloração inadequada.

Materiais obtidos de pacientes sob terapia antibiótica e/ou de culturas velhas não causam alteração da morfologia do organismo.

A observação direta do material não permite determinar a qualidade da amostra e realizar o diagnóstico presuntivo do agente etiológico.

Amostras de fezes coletadas em frasco, que não o fornecido pelo laboratório, não devem ser rejeitadas.

Amostras para cultura de anaeróbios de material de expectoração e lavado brônquico devem ser rejeitadas.

A proporção sangue/aditivo impróprio e a presença de microcoágulos não são critérios para a rejeição de amostras de sangue.

Não há sequência recomendada quanto aos tipos de tubos na coleta (venopunção), uma vez que não há riscos de contaminação das amostras com aditivos do interior dos tubos.

Urina por jato médio, não refrigerada nas primeiras 2 horas após a coleta, não deve ser rejeitada nos casos de solicitação de cultura para a pesquisa de anaeróbios.

É correta apenas a afirmativa 2.

É correta apenas a afirmativa 3.

São corretas apenas as afirmativas 1 e 3.

São corretas apenas as afirmativas 2 e 3.

São corretas as afirmativas 1, 2 e 3.