Tenha cuidado ao apanhar cacos de vidro diretamente com as mãos ou pano.

Faça a limpeza regular em banho-maria, a fim de evitar a multiplicação de microrganismos.

Na busca por maior tranquilidade e concentração, é recomendável trabalhar sozinho, as vezes até mesmo a noite, no laboratório.

A cabine de segurança biológica (CSB) pode ser considerado um local apropriado para armazenamento de objetos, devido ao seu ambiente protegido de contaminantes.

É expressamente proibido pipetar com a boca qualquer produto químico, com exceção apenas da água, por ser inerte.

O gel de poliacrilamida não é recomendado para separação de RNA.

Os géis de agarose são utilizados tanto para separação de proteínas como de ácidos nucleicos.

Os únicos meios de suporte usados na eletroforese são agarose e acrilamida por serem química e fisicamente inertes.

A propriedade gelificante da acrilamida é atribuída à formação de pontes de hidrogênio inter e intra-moleculares entre as cadeias.

O tamanho do poro do gel é controlado pela concentração da agarose, com poros grandes formados em altas concentrações e poros menores em baixas concentrações.

A mobilidade eletroforética do DNA através do gel é influenciada apenas pelo tamanho e conformação da molécula.

Para a separação de moléculas de DNA maiores que 50 kb é recomendado o uso de eletroforese em gel de campo pulsado (pulsed field).

O tipo de matriz usada depende do tamanho dos fragmentos de DNA sendo a matriz de poliacrilamida mais utilizada para separar fragmentos maiores.

A estrutura necessária para a eletroforese vertical e horizontal consiste em uma fonte de tensão, uma unidade de eletroforese e uma câmera para digitalização.

O princípio se baseia no fato de biomoléculas com carga negativa quando aplicadas ou imersas em uma matriz de gel e submetidas a um campo elétrico migram em direção ao polo negativo.

É possível a quantificação de carga viral em ambos.

Os reagentes usados na PCR convencional e PCR em tempo real são iguais.

A etapa de manipulação das amostras pós-PCR inexiste na PCR em tempo real.

A PCR em tempo real usa a mesma plataforma de instrumentos que a PCR convencional.

Os dados gerados na PCR em tempo real são mais precisos e obtidos no mesmo período de tempo que a PCR convencional.

Decaptação.

Câmara de CO ₂ .

Deslocamento cervical.

Exaguinação sem anestesia.

Superdosagem com barbitúrico e anestésicos.

Titulação de óxido-redução.

Titulação complexométrica.

Titulação potenciométrica.

Titulação etiloamônica.

Titulação ácido-base.

A condição de referência para esterilização de preparações aquosas é aquecimento de, no mínimo, 121°C por, pelo menos, 5 minutos.

Para a utilização desse método de esterilização, a condição de referência é uma temperatura mínima de 160°C por, pelo menos, 60 minutos.

O indicador biológico de escolha utilizado para validar e monitorar esse tipo de esterilização é a preparação de esporos Bacillus atrophaeus.

O indicador biológico mais adequado e descrito por compêndios que padronizam a utilização correta autoclaves, o Geobacillus stearothermophilus, deve ser avaliado no programa de validação do equipamento e na ocorrência de alguma alteração.

Os indicadores biológicos são utilizados preferencialmente para casos em que o autoclave sofreu alguma manutenção. Para equipamentos novos, não é necessário realizar esse tipo de validação, uma vez que o fabricante deve garantir a funcionalidade do equipamento.

Substâncias que porventura caiam no prato da balança devem ser removidas imediatamente, evitando possíveis danos ou avarias ao equipamento.

Os materiais a serem pesados devem, sempre que possível, ser colocados diretamente sobre o prato da balança, pois o uso de recipientes aumenta a chance de erro.

Durante a pesagem de materiais, a temperatura é um fator que não precisa ser levado em consideração, uma vez que esse fator não influencia no valor da massa.

Quando a balança não estiver em uso, suas portas deverão permanecer abertas para possibilitar a circulação de ar dentro do equipamento, evitando o aparecimento de fungos.

As partes móveis da balança e os pesos de referência devem ser manuseadas com as mãos sem uso de equipamentos de proteção individual sempre que for necessário a realização de uma limpeza periódica.

O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

A coleta de líquido cefalorraquidiano pode ser realizada por qualquer profissional de saúde de nível superior, por ser de simples execução.

Coleta de amostras de urina para cultura exigem limpeza da região genital, tanto para pacientes do sexo masculino como feminino, devendo ser coletado o primeiro jato da urina.

Durante a realização da coleta de sangue venoso, a alteração da sequência dos tubos de coleta à vácuo não acarreta interferência significativa nos resultados das análises laboratoriais.

As precauções universais sobre coleta de material biológico estabelecem que nem todo material biológico pode ser considerado potencialmente de risco, sendo um exemplo disso coleta de sangue de parentes de primeiro grau.

Na coleta de sangue venoso e/ou arterial, deve-se ter um conhecimento prévio sobre os aditivos e cor das tampas dos tubos de coleta à vácuo, uma vez que cada cor está associada a presença de um anticoagulante específico para determinada análise laboratorial.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.

O paciente deve sempre ser orientado a manter-se em jejum mínimo de 12 horas antes da realização de quaisquer exames laboratoriais.

Para a coleta de urina para os exames de parcial de urina e urocultura, o paciente deve ser aconselhado a colher o primeiro jato de urina afim de aumentar a sensibilidade para visualização e/ou isolamento de microrganismos patológicos.

O uso de garrote ou torniquete é obrigatório para os procedimentos de venopunção, pois melhora a visualização e a seleção do vaso sanguíneo para a procedimento de coleta.

O uso continuado e prolongado de garrote ou torniquete não apresenta evidências de interferir no resultado de exames laboratoriais.

Para coleta de urina de 24 horas deve-se orientar o paciente a iniciar o processo descartando a primeira urina da manhã, e seguir coletando todas as demais micções até o próximo dia no mesmo horário iniciado, porém coletando-se a primeira urina da manhã do dia seguinte, mantendo todo o material sob refrigeração até sua entrega ao laboratório clínico.

A coloração negativa com Tinta da China permite a visualização de estruturas leveduriformes encapsuladas.

O teste de VDRL é um teste imunológico de microfloculação auxiliar no diagnóstico de sífilis, em que o tempo e temperatura ambiente devem ser controlados durante sua execução.

Equipamentos automatizados de laboratório devem ser calibrados diariamente afim de garantir a obtenção de resultados minimante confiáveis.

Amostras de soro para dosagem de bilirrubina devem ser protegidas da luz ambiente afim de evitar resultados falsamente diminuídos.

Frascos e recipientes utilizados em análises microbiológicas devem ser rigorosamente limpos, desengordurados e estéreis.

A coloração com azul de cresil brilhante é amplamente empregada para caracterização diferencial de leucócitos em sangue periférico.

O esfregaço sanguíneo, utilizado especialmente para a leucometria diferencial e avaliação geral da série vermelha e plaquetas, deve ser executado de forma rápida, com secagem ao ar quente e leitura na parte espessa do esfregaço.

O anticoagulante EDTA deve ser evitado para a análise do hemograma pois induz a agregação plaquetária e distorções na estrutura de eritrócitos.

Colorações de Wright, May-Grunwald, Giemsa e Leishman são utilizadas, geralmente em associação, para a coloração de esfregaços sanguíneos, fornecendo uma adequada caracterização de estruturas leucocitárias que permite sua distinção e diferenciação.

Os reticulócitos podem ser contados em esfregaços de sangue periférico corados pela técnica de MayGrunwald-Giemsa.

Equívocos na fase pré-analítica – dentre os quais pedidos incompletos de exames, falta de orientação ao paciente, coleta insuficiente ou em tubos inadequados, transporte inadequado e centrifugação em tempo insuficiente – são responsáveis pela maior parte dos erros laboratoriais.

A monitorização dos processos de análise através do Controle Interno e Externo de Qualidade consistem em importantes ferramentas para executar com maior eficiência e minimizar erros da fase analítica.

A preparação de laudos, impressão ou transmissão dos laudos e sua interpretação representam etapas da fase pós-analítica.

A icterícia, caracterizada pelo aumento de lipídeos plasmáticos, pode ter sua interferência minimizada na dosagem de bilirrubina através da proteção da exposição a luz.

A hemólise é um interferente bastante crítico em laboratório, capaz de alterar potencialmente o resultado de ensaios como dosagem de potássio, lactato-desidrogenase (LDH) e aspartato-amino-transferase (AST).

Deve-se coletar a amostra em tubo com anticoagulante EDTA e executar os testes imediatamente

Deve-se proceder a coleta em tubo com anticoagulante citrato de sódio, com atenção rigorosa ao volume indicado no tubo.

Deve-se proceder a coleta em tubo com heparina com atenção ao volume de amostra que pode variar no máximo em 10% para mais ou para menos do indicado no tubo.

Deve-se utilizar o tubo de citrato de sódio para o exame de TAP, EDTA para TTPA e heparina para o Fibrinogênio.

A coleta deve ser rápida aplicando-se o garrote durante todo o processo.