O tempo de sangramento, que pode ser medido pelo método de Duke, avalia o tempo durante o qual marcas de sangue são deixadas em um papel de filtro.

O tempo de protrombina é alterado por deficiência nos fatores XII e XI.

O tempo de trombina mede a velocidade de coagulação do sangue após a retirada da trombina por cromatografia.

O tempo de tromboplastina parcial ativada avalia apenas os fatores da via extrínseca da coagulação.

A heparina inibe diretamente o fator XII. Portanto, o acompanhamento de seu efeito anticoagulante somente pode ser realizado por meio da dosagem desse fator.

O TOTG é realizado por meio da ingestão de 75 mg de glicose, seguida de dosagens enzimáticas de AST e ALT.

O TOTG não deve ser realizado em gestantes, devido aos riscos para o feto.

Para a realização do TOTG, é correto administrarem-se 75 g ou 100 g de glicose e realizarem-se dosagens de glicose até 2 ou 3 horas após a ingestão.

Durante a realização do TOTG, as dosagens de glicose são feitas por meio de imunoensaio.

Diversos testes laboratoriais para diagnóstico de infecção por HIV detectam a presença de lipídios do envelope viral.

Testes de ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) pesquisam anticorpos anti-HIV circulantes.

O método que utiliza fluorescência para diagnóstico de infecção por HIV detecta enzimas virais.

Um paciente portador de infecção assintomática por HIV pode receber diagnóstico por meio de testes laboratoriais que dosam a atividade da transcriptase reversa livre no plasma.

O método de detecção do HIV por PCR (polymerase chain reaction), apesar de usado para o diagnóstico, não serve para a quantificação da carga viral.

Freqüentemente, observa-se aumento de hemoglobina e de hematócrito durante a manifestação de rash cutâneo.

Devido à etiologia infecciosa da doença, é característica a presença de leucocitose.

Se for detectada uma concentração aumentada de anticorpos anti-DNA, outros testes podem ser dispensados, uma vez que esse teste é suficiente para firmar o diagnóstico de LES.

Nos exames de urinálise, pode ser observada proteinúria acima de 0,01 g/dia e(ou) cilindros mistos.

Freqüentemente, pacientes com LES apresentam resultados falsos-negativos em testes sorológicos para sífilis.

A dosagem de insulina é realizada pelo método da glicose oxidase.

O estrógeno, hormônio constituído por proteínas, é dosado pelo método do biureto.

O hormônio TSH, sintetizado pela tireóide, é dosado rotineiramente, em laboratórios de análises clínicas, por espectrometria de massa.

A dosagem do hormônio pepsina sofre influência do uso de inibidores da secreção ácida gástrica.

Em um mesmo indivíduo, espera-se encontrar concentração maior de insulina após as refeições que antes delas.

Microrganismos que sintetizam catalase necessariamente causam hemólise quando em contato com eritrócitos.

A catalase é um carboidrato utilizado como nutriente por diversos microrganismos.

O preparo de um meio de cultura que contenha catalase permite a identificação de microrganismos catalase-positivos.

Devido às características tóxicas da catalase, as normas de biossegurança da ANVISA proíbem a manipulação, em laboratórios hospitalares, de organismos que a produzam.

A adição de peróxido de hidrogênio a uma cultura de microrganismos catalase-positivos causa a produção de pequenas bolhas de oxigênio.

o formato de cilindros e a motilidade em meio líquido.

a transmissão por picada de insetos e a síntese de betagalactosidase.

a capacidade de realizar metabolismo anaeróbico e a visualização por bacterioscopia sem corantes.

a expressão de antígenos de superfície e o agrupamento em cadeias.

Os componentes para essa solução devem, obrigatoriamente, ser esterilizados antes do preparo da mesma, pois não há meios de esterilização que mantenham inalteradas as características bioquímicas dessa solução.

Para o correto preparo da solução, devem ser adicionados 39,6 g de asparagina e 53,4 g de alanina a 1 L de água.

O procedimento correto de preparo da solução consiste na adição dos solutos a um volume de solvente menor que o volume final e na medição precisa do volume final da solução em balão volumétrico.

A solução de asparagina e a solução de alanina devem ser preparadas separadamente e somente misturadas ao final, para que não sofram polimerização.

O solvente a ser utilizado deve ser etanol e não, água, para se evitar a contaminação da solução.

Caso seja necessário favorecer a proliferação de todos os microrganismos presentes na amostra, é correto utilizar-se um meio de cultura seletivo.

O ágar-sangue é um meio de enriquecimento freqüentemente utilizado para a cultura.

Se for necessária a obtenção de colônias puras, a partir de unidades formadoras de colônias, devem-se usar somente meios de cultura líquidos.

O controle de qualidade de meios de cultura feito pela incubação do meio sem a adição intencional de microrganismos é suficiente para a avaliação tanto de resultados falsos-positivos quanto de falsos-negativos.

O meio ágar chocolate apresenta, em sua composição, predominantemente lipídios, o que favorece o crescimento de microrganismos Gram positivos.

Glicosúria de 70 mg/dL colhida após jejum de 12 h de um indivíduo com função renal normal afasta a suspeita de diabetes.

A detecção de cetonúria dispensa a determinação de glicose na urina, pois a cetonúria somente é detectada quando a glicosúria é muito intensa.

Corpos cetônicos são detectáveis ao exame de microscopia óptica do sedimento urinário.

Tanto a glicosúria quanto a cetonúria podem ser avaliadas por meio de fitas que contenham reagentes impregnados.

A determinação do tipo de cilindros do sedimento pode ser automatizada com o uso de fitas reativas.

O material coletado por punção não é adequado à cultura de microrganismos, cujo crescimento é inviabilizado pela pressão a que o material é submetido durante a aspiração.

A desinfecção com álcool 70% é suficiente para se preparar o material a ser utilizado para armazenamento do líquido coletado.

Após a coleta do material, o tubo deve ser esterilizado em chama de bico de Bunsen.

A coleta de material da cavidade pleural para bacterioscopia deve ser feita em seringa e tubo heparinizados, para que o sangue normalmente presente nesse espaço não prejudique a análise.

Uma das possíveis formas de se preparar o material a ser utilizado para a coleta é a esterilização por raios gama.

As formas identificadas pelo número 1 na figura são detectadas no exame parasitológico de fezes dos indivíduos contaminados.

O desenvolvimento das formas identificadas pelos números 6 e 7 independe do hospedeiro.

As formas que infectam o homem, penetrando em sua pele, são as indicadas pelo número 3.

Apenas a forma indicada pelo número 3 pode ser detectada nas fezes humanas.

O método de Kato-Katz permite detectar as formas identificadas pelo número 4.

A avaliação da presença de hematúria é feita por meio de análise fotométrica da urina centrifugada, desprezando-se o sedimento.

É possível detectar-se proteinúria pela adição de solução ácida à urina seguida do aquecimento de parte dessa solução.

A análise quantitativa de proteínas da urina é rotineiramente feita utilizando-se o reagente de Fehling.

Se for encontrada a concentração de 45 mg/L de proteínas na urina de um paciente, é correto afastar-se a hipótese de proteinúria.

Considere que o exame microscópico do sedimento apresente imagens cuja interpretação leve à dúvida de serem cristais de oxalato de cálcio ou hemácias. Nesse caso, a dúvida pode ser eliminada pela adição de ácido acético a 2%, que preserva as hemácias e dissolve os cristais.

Os índices hematimétricos são usados para o diagnóstico de processos infecciosos agudos, portanto não se espera que esses índices estejam alterados no paciente mencionado.

Se, nesse paciente, o hematócrito estiver diminuído em relação ao valor normal e a contagem de eritrócitos estiver aumentada, o VCM estará aumentado.

A redução no valor do hematócrito leva à redução do valor da CHCM, independentemente da concentração de hemoglobina.

Espera-se encontrar contagem de reticulócitos muito reduzida no paciente mencionado.

No referido paciente, espera-se encontrar redução da concentração de hemoglobina e do hematócrito.

Para se preparar um teste que avalie a atividade de gamaglutamil- trasferase, é suficiente colocar o plasma do paciente em contato com gama-glutamil-p-nitroanilina e fazer uma única medida de absorbância.

Se o tampão TRIS disponível estiver na concentração de 1 mol/L, devem-se adicionar 185 mL desse tampão a 815 mL de água para se obter a concentração correta, desde que a densidade do tampão seja igual à da água.

Na situação mencionada, não são necessárias repetições da dosagem para validação estatística, pois não se trata de um estudo epidemiológico.

Deve ser feita uma curva de calibração realizando-se dosagens fotométricas de gama-glutamil-p-nitroanilina.

Caso o tampão preparado esteja em pH = 8,75, deve-se adicionar uma pequena quantidade de base para alcalinizar a solução até se obter o pH desejado.

A dosagem de aspartato aminotransferase é um teste sensível e específico para a determinação de lesão hepática, pois tal enzima é exclusiva do hepatócito.

A avaliação da função hepática não pode ser feita por meio de dosagem de enzimas no sangue, pois estas são secretadas para o intestino e não, para a circulação.

Quando são usados métodos colorimétricos para dosagem de enzimas, sua concentração é medida em função da intensidade de luz emitida por essas moléculas, necessariamente em resposta a uma excitação em comprimento de onda diferente daquele da detecção.

A análise da velocidade de formação do produto em função da concentração do substrato pode ser corretamente considerada uma análise de cinética enzimática.

A dosagem de enzimas por espectrofotometria pode ser automatizada, de forma que um grupo de amostras de diferentes pacientes pode ser colocado em um mesmo tubo, pois o espectro assim obtido fornece as dosagens individuais para cada paciente.

O xenodiagnóstico consiste na exposição de Xenopus laevis ao sangue do paciente, para posterior pesquisa do parasita.

O diagnóstico sorológico é realizado pela detecção de IgG contra Tripanosoma cruzi em até 5 dias após a inoculação pelo vetor, pois o IgG passa a ter níveis não-detectáveis após esse período.

A análise microscópica direta de um concentrado de leucócitos obtido por centrifugação permite a visualização do parasita em pacientes na fase aguda da doença.

O imunodiagnóstico não tem aplicação na fase crônica da doença de Chagas, pois o número de parasitas circulantes é geralmente menor que na fase aguda.

Não é viável o uso de meios de cultura para aumentar a sensibilidade dos testes de detecção dos parasitas, uma vez que estes somente se reproduzem se tanto o hospedeiro quanto o vetor participarem de seu ciclo de vida.