Tema central: Escolher o método coproparasitológico conforme a forma evolutiva do parasito (cisto, trofozoíto, ovo, larva). Em provas, associe: flutuação/centrífugo-flutuação → cistos de protozoários e ovos leves; sedimentação → ovos/cistos mais pesados; Baermann/Harada-Mori → larvas; Kato-Katz → ovos de helmintos, especialmente Schistosoma.

Alternativa correta: C — Método de flutuação de Willis e centrífugo-flutuação com sulfato de zinco (Faust) são técnicas de concentração por flutuação apropriadas para cistos de protozoários, incluindo Iodamoeba bütschlii. O Faust (ZnSO₄, densidade ~1,18) tem alta recuperação de cistos (ex.: Giardia, Entamoeba, Iodamoeba). O Willis (solução salina saturada) flutua ovos leves e pode recuperar cistos. Referências: WHO – Basic Laboratory Methods in Medical Parasitology; CDC DPDx; Garcia LS, Diagnostic Medical Parasitology.

Por que está certo? A combinação proposta casa o tipo de técnica (flutuação) com a forma pesquisada (cisto), maximizando a chance de detecção em fezes preservadas.

Análise das incorretas

A) Sedimentação espontânea (Hoffmann) e centrífugo-flutuação (Faust) para larvas de Strongyloides. Inadequado: essas técnicas são voltadas a ovos/cistos; para larvas de Strongyloides os métodos de escolha são Baermann-Moraes ou Harada-Mori ou cultura em ágar (OMS; UpToDate/CDC).

B) Stoll-Hausheer e Baermann-Moraes para trofozoítas de Entamoeba coli. Incorreto: Stoll é quantificação de ovos; Baermann é para larvas. Trofozoítas são frágeis e exigem exame a fresco imediato e/ou colorações permanentes (tricrômica/hematoxilina férrica) em amostra fixada (CDC/ASM).

D) Kato-Katz e Harada & Mori para ovos de Schistosoma mansoni. Misto: Kato-Katz é correto para ovos de S. mansoni (padrão OMS para quantificação), porém Harada & Mori é técnica de coprocultura de larvas de ancilostomídeos/Strongyloides, não para ovos de Schistosoma. Combinação, portanto, incompatível.

E) Baermann-Moraes e hematoxilina férrica para trofozoítas de Entamoeba histolytica. A hematoxilina férrica (ou tricrômica) é apropriada para trofozoítas/cistos de amebas; porém Baermann é exclusivo para larvas de nematódeos. Mistura metodológica sem propósito técnico.

Dicas de prova

• Larvas → Baermann, Harada-Mori.
• Ovos (quantificação) → Kato-Katz; ovos/cistos pesados → sedimentação.
• Cistos de protozoários → flutuação (Faust/Willis) e colorações permanentes para morfologia.

Fontes úteis: WHO Basic Laboratory Methods in Medical Parasitology; CDC DPDx (Intestinal Parasites); Garcia LS, Diagnostic Medical Parasitology; Ministério da Saúde – Manual de Diagnóstico Laboratorial das Parasitoses Intestinais.

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