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Q3329649 Técnicas em Laboratório
De acordo com dados da Organização Mundial da Saúde (OMS), 2022, o enfrentamento da tuberculose (TB) persiste como grande desafio para a saúde pública no Brasil. A crise sanitária e social agravada pela pandemia da Covid-19 continua a ter um impacto negativo no acesso ao diagnóstico e ao tratamento da doença. Em relação ao diagnóstico da tuberculose, a baciloscopia, apesar de ser uma técnica pouco sensível, ainda é muito utilizada no Brasil e no mundo. A coloração de Ziehl-Neelsen, utilizada para bacilos álcool-ácidoresistentes (BAAR), pode ser facilmente realizada em laboratórios de saúde. Das opções abaixo, aquela em que todas as substânciasrelacionadas estão entre as principais substâncias usadas para essa coloração é:  
Alternativas

Gabarito comentado

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Tema central: Diagnóstico laboratorial da tuberculose por baciloscopia com coloração de Ziehl-Neelsen (BAAR). O princípio: Mycobacterium tuberculosis possui ácidos micólicos na parede celular que retêm o corante básico mesmo após descoloração por álcool-ácido (caráter “álcool-ácido resistente”).

Alternativa correta: Efucsina fenicada (carbol fucsina) + solução de álcool-ácido (descorante, ex.: HCl 3% em etanol ou ácido sulfúrico 20%) + azul de metileno (contracorante). Este é o tríplice padrão da técnica clássica: corar com fucsina aquecendo, descorar com álcool-ácido e contrastar com azul de metileno (ou verde malaquita). BAAR aparecem em vermelho/rosado sobre fundo azul. Referências: Ministério da Saúde (Manual de Recomendações para o Controle da Tuberculose, 2022), WHO (laboratory methods), Koneman.

Por que é a resposta certa? A combinação contempla os três passos essenciais e os reagentes típicos da Ziehl-Neelsen. O fenol da fucsina fenicada e o aquecimento facilitam a penetração do corante através da parede rica em lipídios; a descoloração álcool-ácida remove o corante de bactérias não ácido-álcool resistentes; o contracorante fornece contraste.

Análise das incorretas:

  • APermanganato de potássio é usado na fluorescência (auramina-rodamina) como redutor/quenching; cristal violeta pertence à coloração de Gram, não à Ziehl-Neelsen.
  • B – Mistura reagentes não pertinentes: cristal violeta (Gram) e oxalato de amônio não compõem a Ziehl-Neelsen. Embora haja azul de metileno e etanol, falta a fucsina fenicada e o álcool-ácido específico.
  • CAuramina é corante fluorescente de método alternativo (auramina-O/rodamina), não da Ziehl-Neelsen; iodeto de potássio integra o lugol (Gram).
  • D – Conjunto típico do Gram: cristal violeta + iodeto de potássio (lugol). A presença de etanol e HCl não corrige a ausência da fucsina fenicada e do contracorante apropriado.

Dicas de prova:

  • Memorize a “tríade da Ziehl-Neelsen”: fucsina fenicada + álcool-ácido + azul de metileno.
  • Não confunda com Gram (cristal violeta + lugol) nem com a técnica fluorescente (auramina + permanganato).
  • Lembre: BAAR vermelho em fundo azul; técnica pode ser aquecida (Ziehl-Neelsen) ou fria (Kinyoun).

Contexto clínico: Apesar da menor sensibilidade da baciloscopia, é rápida e barata. Atualmente, OMS e MS recomendam o teste rápido molecular (Xpert MTB/RIF) como método inicial, mantendo a baciloscopia para triagem e controle de tratamento (WHO Global TB Report 2022; MS 2022).

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