50µL e 2µL.

500µL e 20µL.

500µL e 2µL.

50µL e 20µL.

5000µL e 200µL

Mufla e estufa.

Autoclave e estufa.

Forno e mufla.

Estufa e mufla.

Estufa e autoclave.

Todas as proposições estão corretas.

As proposições I, II e IV estão corretas

Apenas as proposições II e IV estão corretas.

Apenas a proposição III está INCORRETA.

Todas as proposições estão INCORRETAS.

São utilizados os reagentes cristal de violeta, lugol, álcool-cetona e fucsina básica, nesta ordem.

O lugol é utilizado como mordente, formando um complexo com o corante, insolúvel em água, que se fixa a parede celular das bactérias.

A fucsina básica serve como corante primário, se complexa com o iodo e dá a cor característica das bactérias Gram positivas.

A etapa de descoloração com solvente orgânico álcool-cetona é crítica, já que o prolongamento da exposição pode provocar a descoloração até mesmo dos microrganismos Gram positivos, gerando a visualização falsa de Gram negativo.

Pode-se distinguir as bactérias que adquirem coloração rosada (Gram negativas) e as de coloração púrpura (Gram positivas).

Deve-se coletar a amostra em tubo com anticoagulante EDTA e executar os testes imediatamente

Deve-se proceder a coleta em tubo com anticoagulante citrato de sódio, com atenção rigorosa ao volume indicado no tubo.

Deve-se proceder a coleta em tubo com heparina com atenção ao volume de amostra que pode variar no máximo em 10% para mais ou para menos do indicado no tubo.

Deve-se utilizar o tubo de citrato de sódio para o exame de TAP, EDTA para TTPA e heparina para o Fibrinogênio.

A coleta deve ser rápida aplicando-se o garrote durante todo o processo.

Equívocos na fase pré-analítica – dentre os quais pedidos incompletos de exames, falta de orientação ao paciente, coleta insuficiente ou em tubos inadequados, transporte inadequado e centrifugação em tempo insuficiente – são responsáveis pela maior parte dos erros laboratoriais.

A monitorização dos processos de análise através do Controle Interno e Externo de Qualidade consistem em importantes ferramentas para executar com maior eficiência e minimizar erros da fase analítica.

A preparação de laudos, impressão ou transmissão dos laudos e sua interpretação representam etapas da fase pós-analítica.

A icterícia, caracterizada pelo aumento de lipídeos plasmáticos, pode ter sua interferência minimizada na dosagem de bilirrubina através da proteção da exposição a luz.

A hemólise é um interferente bastante crítico em laboratório, capaz de alterar potencialmente o resultado de ensaios como dosagem de potássio, lactato-desidrogenase (LDH) e aspartato-amino-transferase (AST).

A coloração negativa com Tinta da China permite a visualização de estruturas leveduriformes encapsuladas.

O teste de VDRL é um teste imunológico de microfloculação auxiliar no diagnóstico de sífilis, em que o tempo e temperatura ambiente devem ser controlados durante sua execução.

Equipamentos automatizados de laboratório devem ser calibrados diariamente afim de garantir a obtenção de resultados minimante confiáveis.

Amostras de soro para dosagem de bilirrubina devem ser protegidas da luz ambiente afim de evitar resultados falsamente diminuídos.

Frascos e recipientes utilizados em análises microbiológicas devem ser rigorosamente limpos, desengordurados e estéreis.

O paciente deve sempre ser orientado a manter-se em jejum mínimo de 12 horas antes da realização de quaisquer exames laboratoriais.

Para a coleta de urina para os exames de parcial de urina e urocultura, o paciente deve ser aconselhado a colher o primeiro jato de urina afim de aumentar a sensibilidade para visualização e/ou isolamento de microrganismos patológicos.

O uso de garrote ou torniquete é obrigatório para os procedimentos de venopunção, pois melhora a visualização e a seleção do vaso sanguíneo para a procedimento de coleta.

O uso continuado e prolongado de garrote ou torniquete não apresenta evidências de interferir no resultado de exames laboratoriais.

Para coleta de urina de 24 horas deve-se orientar o paciente a iniciar o processo descartando a primeira urina da manhã, e seguir coletando todas as demais micções até o próximo dia no mesmo horário iniciado, porém coletando-se a primeira urina da manhã do dia seguinte, mantendo todo o material sob refrigeração até sua entrega ao laboratório clínico.