Tenha cuidado ao apanhar cacos de vidro diretamente com as mãos ou pano.

Faça a limpeza regular em banho-maria, a fim de evitar a multiplicação de microrganismos.

Na busca por maior tranquilidade e concentração, é recomendável trabalhar sozinho, as vezes até mesmo a noite, no laboratório.

A cabine de segurança biológica (CSB) pode ser considerado um local apropriado para armazenamento de objetos, devido ao seu ambiente protegido de contaminantes.

É expressamente proibido pipetar com a boca qualquer produto químico, com exceção apenas da água, por ser inerte.

O gel de poliacrilamida não é recomendado para separação de RNA.

Os géis de agarose são utilizados tanto para separação de proteínas como de ácidos nucleicos.

Os únicos meios de suporte usados na eletroforese são agarose e acrilamida por serem química e fisicamente inertes.

A propriedade gelificante da acrilamida é atribuída à formação de pontes de hidrogênio inter e intra-moleculares entre as cadeias.

O tamanho do poro do gel é controlado pela concentração da agarose, com poros grandes formados em altas concentrações e poros menores em baixas concentrações.

A mobilidade eletroforética do DNA através do gel é influenciada apenas pelo tamanho e conformação da molécula.

Para a separação de moléculas de DNA maiores que 50 kb é recomendado o uso de eletroforese em gel de campo pulsado (pulsed field).

O tipo de matriz usada depende do tamanho dos fragmentos de DNA sendo a matriz de poliacrilamida mais utilizada para separar fragmentos maiores.

A estrutura necessária para a eletroforese vertical e horizontal consiste em uma fonte de tensão, uma unidade de eletroforese e uma câmera para digitalização.

O princípio se baseia no fato de biomoléculas com carga negativa quando aplicadas ou imersas em uma matriz de gel e submetidas a um campo elétrico migram em direção ao polo negativo.

Decaptação.

Câmara de CO ₂ .

Deslocamento cervical.

Exaguinação sem anestesia.

Superdosagem com barbitúrico e anestésicos.

Titulação de óxido-redução.

Titulação complexométrica.

Titulação potenciométrica.

Titulação etiloamônica.

Titulação ácido-base.

A condição de referência para esterilização de preparações aquosas é aquecimento de, no mínimo, 121°C por, pelo menos, 5 minutos.

Para a utilização desse método de esterilização, a condição de referência é uma temperatura mínima de 160°C por, pelo menos, 60 minutos.

O indicador biológico de escolha utilizado para validar e monitorar esse tipo de esterilização é a preparação de esporos Bacillus atrophaeus.

O indicador biológico mais adequado e descrito por compêndios que padronizam a utilização correta autoclaves, o Geobacillus stearothermophilus, deve ser avaliado no programa de validação do equipamento e na ocorrência de alguma alteração.

Os indicadores biológicos são utilizados preferencialmente para casos em que o autoclave sofreu alguma manutenção. Para equipamentos novos, não é necessário realizar esse tipo de validação, uma vez que o fabricante deve garantir a funcionalidade do equipamento.

Substâncias que porventura caiam no prato da balança devem ser removidas imediatamente, evitando possíveis danos ou avarias ao equipamento.

Os materiais a serem pesados devem, sempre que possível, ser colocados diretamente sobre o prato da balança, pois o uso de recipientes aumenta a chance de erro.

Durante a pesagem de materiais, a temperatura é um fator que não precisa ser levado em consideração, uma vez que esse fator não influencia no valor da massa.

Quando a balança não estiver em uso, suas portas deverão permanecer abertas para possibilitar a circulação de ar dentro do equipamento, evitando o aparecimento de fungos.

As partes móveis da balança e os pesos de referência devem ser manuseadas com as mãos sem uso de equipamentos de proteção individual sempre que for necessário a realização de uma limpeza periódica.

O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.