O Método de Hoffman, Pons e Janer é um método que detecta larvas vivas, através de hidrotropismo e termotropismo positivo.

O Método de Faust consiste na centrífugo-flutuação em sulfato de zinco.

O Método de Baermann-Moraes não deve ser utilizado para detectar larvas de Strongyloides stercoralis.

A coleta de 3 amostras de fezes para exame parasitológico é sugerida quando o quadro de diarreia é superior a 7 dias em pacientes imunocompetentes.

A cultura de fezes realizada de rotina não prevê testes para Shigella, Salmonella e Campylobacter.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 3.

São corretas apenas as afirmativas 1, 2 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 1, 4 e 5.

São corretas apenas as afirmativas 2, 3 e 4.

São corretas apenas as afirmativas 3, 4 e 5.

A técnica mais utilizada para semeadura em placa é a técnica de esgotamento, cujo objetivo é o agrupamento de colônias.

Na semeadura, a amostra estriada sobre toda a superfície do ágar em placa dificulta a contagem de colônias.

As placas de meio de cultura semeadas devem ser incubadas por 12 horas em estufa bacteriológica, e se não houver crescimento visível de colônias bacterianas, a incubação pode ser prolongada por apenas mais 24 horas.

A semeadura de quantidade conhecida da amostra com alça calibrada permite fazer a quantificação das bactérias no material.

A observação das características da colônia que se desenvolveu na placa dificilmente permite a identificação do grupo bacteriano.

O exame “a fresco” não permite avaliar a presença de estruturas microbianas com características peculiares e que, em geral, apresentam tamanho suficiente para serem visualizadas sem coloração.

A maioria das estruturas bacterianas é de fácil visualização e diferenciação no exame “a fresco”, não precisando ser submetida a processo de coloração.

No exame direto após coloração, os problemas de interpretação geralmente resultam de má preparação do esfregaço: finos ou espessos, de aquecimento da lâmina e descoloração inadequada.

Materiais obtidos de pacientes sob terapia antibiótica e/ou de culturas velhas não causam alteração da morfologia do organismo.

A observação direta do material não permite determinar a qualidade da amostra e realizar o diagnóstico presuntivo do agente etiológico.

Amostras de fezes coletadas em frasco, que não o fornecido pelo laboratório, não devem ser rejeitadas.

Amostras para cultura de anaeróbios de material de expectoração e lavado brônquico devem ser rejeitadas.

A proporção sangue/aditivo impróprio e a presença de microcoágulos não são critérios para a rejeição de amostras de sangue.

Não há sequência recomendada quanto aos tipos de tubos na coleta (venopunção), uma vez que não há riscos de contaminação das amostras com aditivos do interior dos tubos.

Urina por jato médio, não refrigerada nas primeiras 2 horas após a coleta, não deve ser rejeitada nos casos de solicitação de cultura para a pesquisa de anaeróbios.

materiais dielétricas apresentam condutividade que obedece a Lei de Ohm em intervalos de temperatura mais elevado.

um dielétrico é um material isolante elétrico que, sob a atuação de um campo elétrico exterior acima do limite de sua rigidez dielétrica, permite o fluxo da corrente elétrica.

são materiais sólidos, geralmente cristalinos, que apresenta um band gap de até 4,0 eV.

a fronteira entre a banda de valência e banda de condução em um material dielétrico é bastante tênue, assim, com o aumento de temperatura, é possível observar a promoção de cargas elétricas de uma banda para outra.

materiais dielétricas podem ser sólidos moleculares, cujas moléculas que constituem o material são incapazes de exibir polarização quando submetidas a um campo elétrico externo.

Uso de equipamentos de proteção individual (EPI´s) como luvas, gorros e máscaras que devem ser fornecidos pelo estabelecimento, garantindo a segurança tanto do paciente quanto do colaborador.

A limpeza das bancadas é um procedimento básico de qualquer serviço de saúde, incluindo os laboratórios de análises clínicas. Por tratar-se de procedimento simples e de fácil execução, não há a necessidade de ser descrito em Procedimento Operacional Padrão (POP).

O álcool 70% é concentração mais adequada para realização de assepsia de bancadas e das mãos.

Todas as amostras biológicas devem ser tratadas como potencialmente infectantes em laboratório de análises clínicas.

A semeadura de material para cultura deve ser realizada em capela de fluxo.

I – IV.

I.

III – IV.

I – II – III.

II – III – IV.

hemoglobina.

esterase leucocitária.

glicose.

protozoários.

plaquetas.

Proveta: ideal para armazenamento de soluções por possuir sistema de tampa com vedação adequado.

Balão volumétrico: utilizado para medir volumes diversos com baixa precisão.

Béquer: ideal para realizar medições volumétricas com precisão.

Pipeta volumétrica: utilizada para medição e transferência de grandes volumes sem oferecer precisão.

Erlenmeyer: ideal para armazenar, aquecer e misturar produtos, podendo, também, ser utilizado em preparo de meios de cultura. Juntamente com a bureta é largamente utilizado em titulações

EDTA (ácido etilenodiamino tetra-acético).

Heparina.

fluoreto de sódio.

citrato de sódio.

cloreto de sódio.

É marcador de replicação viral. Sua positividade indica alta infecciosidade.

É o único anticorpo que confere imunidade ao HBV. Está presente no soro após o desaparecimento do HBsAg, sendo indicador de cura e imunidade. Está presente isoladamente em pessoas vacinadas.

Surge após o desaparecimento do HBeAg, indica o fim da fase replicativa.

É marcador de longa duração, presente nas infecções agudas e crônicas. Representa contato prévio com o vírus.

É o primeiro marcador que aparece no curso da infecção pelo HBV. Na hepatite aguda, ele declina a níveis indetectáveis em até 24 semanas.

3 a 5ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de uma a duas amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 4 horas entre elas.

3 a 5ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de uma a duas amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 8 horas entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de duas a três amostras, coletadas com o intervalo de ao menos 12 horas entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de duas a três amostras, coletadas com o intervalo de ao menos um dia entre elas.

5 a 10ml por frasco (conforme instruções do fabricante), de três a quatro amostras, coletadas com o intervalo de ao menos dois dias entre elas.

Em um frasco conta -gotas escuro, junte 2 ml de lugol concentrado com 38 ml de água destilada.

Em um frasco conta -gotas escuro, junte 10 ml de lugol concentrado com 90 ml de água destilada.

Em um frasco conta -gotas escuro, junte 0,5 ml de lugol concentrado com 49,5 ml de água destilada.

Em um frasco conta -gotas escuro, junte 2 ml de lugol concentrado com 38 ml de iodeto metálico.

Em um frasco conta -gotas escuro, junte 10 ml de lugol concentrado com 90 ml de iodeto metálico.

Colocar aproximadamente 2g de fezes em um frasco de Borrel ou em um copo plástico descartável, com cerca de 5 ml de água e dissolver bem com auxílio de um palito de sorvete descartável.

Colocar duas a três gotas de salina a 0,85% em uma lâmina de vidro. Tocar com a ponta de um palito em vários pontos das fezes, transferindo uma pequena porção para a lâmina de microscopia.

Dissolver cerca de 5g de fezes em 10ml de água e filtrar em gaze dobrada em quatro. Depositar o material em tubo cônico de centrífuga e centrifugar a 1500 rpm por 2 minutos.

Adicionar cerca de 10 ml de formol a 10%, homogenizar, descansar por 10 a 20 minutos.

Preparar uma solução de verde de malaquita. Cortar papel celofane semipermeável em pedaços de 24 mm por 30 mm e deixá-los mergulhados na solução de verde malaquita por pelo menos 24 horas.

MIFC.

Coprotest.

Método de Blagg.

Método de Ritchie.

Método de Hoffmann.

Trato digestório.

Trato respiratório.

Trato intestinal baixo.

Sistema nervoso central.

Trato urinário.

Cor original do meio é marrom, quando positivo, preta.

Cor original do meio é amarela, quando positivo, laranja.

Cor original do meio é branca, quando positivo, púrpura.

Cor original do meio é azul, quando positivo, verde.

Cor original do meio é verde, quando positivo, azul.

Ferro formando precipitado azul.

Ferro formando precipitado amarelo ou laranja.

Ferro formando precipitado marrom escuro ou preto.

Magnésio formando precipitado rosa escuro ou vermelho.

Magnésio formando precipitado esverdeado.