Decaptação.

Câmara de CO ₂ .

Deslocamento cervical.

Exaguinação sem anestesia.

Superdosagem com barbitúrico e anestésicos.

Titulação de óxido-redução.

Titulação complexométrica.

Titulação potenciométrica.

Titulação etiloamônica.

Titulação ácido-base.

A condição de referência para esterilização de preparações aquosas é aquecimento de, no mínimo, 121°C por, pelo menos, 5 minutos.

Para a utilização desse método de esterilização, a condição de referência é uma temperatura mínima de 160°C por, pelo menos, 60 minutos.

O indicador biológico de escolha utilizado para validar e monitorar esse tipo de esterilização é a preparação de esporos Bacillus atrophaeus.

O indicador biológico mais adequado e descrito por compêndios que padronizam a utilização correta autoclaves, o Geobacillus stearothermophilus, deve ser avaliado no programa de validação do equipamento e na ocorrência de alguma alteração.

Os indicadores biológicos são utilizados preferencialmente para casos em que o autoclave sofreu alguma manutenção. Para equipamentos novos, não é necessário realizar esse tipo de validação, uma vez que o fabricante deve garantir a funcionalidade do equipamento.

Substâncias que porventura caiam no prato da balança devem ser removidas imediatamente, evitando possíveis danos ou avarias ao equipamento.

Os materiais a serem pesados devem, sempre que possível, ser colocados diretamente sobre o prato da balança, pois o uso de recipientes aumenta a chance de erro.

Durante a pesagem de materiais, a temperatura é um fator que não precisa ser levado em consideração, uma vez que esse fator não influencia no valor da massa.

Quando a balança não estiver em uso, suas portas deverão permanecer abertas para possibilitar a circulação de ar dentro do equipamento, evitando o aparecimento de fungos.

As partes móveis da balança e os pesos de referência devem ser manuseadas com as mãos sem uso de equipamentos de proteção individual sempre que for necessário a realização de uma limpeza periódica.

O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.

O paciente deve sempre ser orientado a manter-se em jejum mínimo de 12 horas antes da realização de quaisquer exames laboratoriais.

Para a coleta de urina para os exames de parcial de urina e urocultura, o paciente deve ser aconselhado a colher o primeiro jato de urina afim de aumentar a sensibilidade para visualização e/ou isolamento de microrganismos patológicos.

O uso de garrote ou torniquete é obrigatório para os procedimentos de venopunção, pois melhora a visualização e a seleção do vaso sanguíneo para a procedimento de coleta.

O uso continuado e prolongado de garrote ou torniquete não apresenta evidências de interferir no resultado de exames laboratoriais.

Para coleta de urina de 24 horas deve-se orientar o paciente a iniciar o processo descartando a primeira urina da manhã, e seguir coletando todas as demais micções até o próximo dia no mesmo horário iniciado, porém coletando-se a primeira urina da manhã do dia seguinte, mantendo todo o material sob refrigeração até sua entrega ao laboratório clínico.

A coloração negativa com Tinta da China permite a visualização de estruturas leveduriformes encapsuladas.

O teste de VDRL é um teste imunológico de microfloculação auxiliar no diagnóstico de sífilis, em que o tempo e temperatura ambiente devem ser controlados durante sua execução.

Equipamentos automatizados de laboratório devem ser calibrados diariamente afim de garantir a obtenção de resultados minimante confiáveis.

Amostras de soro para dosagem de bilirrubina devem ser protegidas da luz ambiente afim de evitar resultados falsamente diminuídos.

Frascos e recipientes utilizados em análises microbiológicas devem ser rigorosamente limpos, desengordurados e estéreis.

Equívocos na fase pré-analítica – dentre os quais pedidos incompletos de exames, falta de orientação ao paciente, coleta insuficiente ou em tubos inadequados, transporte inadequado e centrifugação em tempo insuficiente – são responsáveis pela maior parte dos erros laboratoriais.

A monitorização dos processos de análise através do Controle Interno e Externo de Qualidade consistem em importantes ferramentas para executar com maior eficiência e minimizar erros da fase analítica.

A preparação de laudos, impressão ou transmissão dos laudos e sua interpretação representam etapas da fase pós-analítica.

A icterícia, caracterizada pelo aumento de lipídeos plasmáticos, pode ter sua interferência minimizada na dosagem de bilirrubina através da proteção da exposição a luz.

A hemólise é um interferente bastante crítico em laboratório, capaz de alterar potencialmente o resultado de ensaios como dosagem de potássio, lactato-desidrogenase (LDH) e aspartato-amino-transferase (AST).

Deve-se coletar a amostra em tubo com anticoagulante EDTA e executar os testes imediatamente

Deve-se proceder a coleta em tubo com anticoagulante citrato de sódio, com atenção rigorosa ao volume indicado no tubo.

Deve-se proceder a coleta em tubo com heparina com atenção ao volume de amostra que pode variar no máximo em 10% para mais ou para menos do indicado no tubo.

Deve-se utilizar o tubo de citrato de sódio para o exame de TAP, EDTA para TTPA e heparina para o Fibrinogênio.

A coleta deve ser rápida aplicando-se o garrote durante todo o processo.

São utilizados os reagentes cristal de violeta, lugol, álcool-cetona e fucsina básica, nesta ordem.

O lugol é utilizado como mordente, formando um complexo com o corante, insolúvel em água, que se fixa a parede celular das bactérias.

A fucsina básica serve como corante primário, se complexa com o iodo e dá a cor característica das bactérias Gram positivas.

A etapa de descoloração com solvente orgânico álcool-cetona é crítica, já que o prolongamento da exposição pode provocar a descoloração até mesmo dos microrganismos Gram positivos, gerando a visualização falsa de Gram negativo.

Pode-se distinguir as bactérias que adquirem coloração rosada (Gram negativas) e as de coloração púrpura (Gram positivas).

Todas as proposições estão corretas.

As proposições I, II e IV estão corretas

Apenas as proposições II e IV estão corretas.

Apenas a proposição III está INCORRETA.

Todas as proposições estão INCORRETAS.

Mufla e estufa.

Autoclave e estufa.

Forno e mufla.

Estufa e mufla.

Estufa e autoclave.

50µL e 2µL.

500µL e 20µL.

500µL e 2µL.

50µL e 20µL.

5000µL e 200µL