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Um técnico de laboratório está realizando um exame quantitativo de urina, mas a amostra apresenta um volume muito baixo. Como essa condição pode influenciar os resultados do exame, e quais medidas devem ser tomadas para garantir a precisão do diagnóstico?
Itens para Verificação:
1. Registrar o volume baixo da amostra e ajustar o cálculo de acordo com o volume disponível.
2. Considerar a necessidade de diluir a amostra para obter melhores resultados.
3. Utilizar um recipiente de coleta adequado para maximizar a quantidade de urina disponível para o exame.
4. Solicitar uma nova amostra se o volume for insuficiente para todas as análises necessárias.
5. Documentar qualquer ajuste ou diluição feita no relatório final.
Alternativas:
Durante a preparação de uma amostra de fezes para a pesquisa de parasitas, o técnico nota que a consistência da amostra é muito líquida, o que pode interferir no resultado final. Quais passos devem ser seguidos para garantir que a análise seja precisa, mesmo com a consistência alterada da amostra?
Itens para Verificação:
1. Homogeneizar a amostra adequadamente antes de realizar o exame microscópico.
2. Utilizar uma técnica de sedimentação para concentrar os parasitas na amostra.
3. Anotar a consistência da amostra no laudo laboratorial.
4. Rejeitar a amostra, solicitando uma nova coleta em melhores condições.
5. Utilizar técnicas adicionais como a coloração de Kinyoun, pois é específica para o tipo de parasita.
Alternativas:
Durante a preparação de um esfregaço para coloração de Gram, um técnico de laboratório acidentalmente utiliza álcool etílico em excesso durante o processo de descoloração. Como essa ação pode afetar os resultados do exame, e quais são as melhores práticas para evitar esse tipo de erro?
Itens para Verificação:
1. O uso excessivo de álcool pode resultar em uma descoloração excessiva, dificultando a diferenciação entre bactérias Gram-positivas e Gram-negativas.
2. A quantidade de álcool deve ser controlada rigorosamente para garantir uma descoloração adequada.
3. A repetição do procedimento de coloração não é necessária, se o esfregaço estiver comprometido.
4. A utilização de um cronômetro durante a descoloração pode ajudar a evitar esse tipo de erro.
5. Corrigir o esfregaço comprometido e realizar uma nova coleta de amostra é a melhor prática em casos de erro.
Alternativas:
Um esfregaço sanguíneo foi preparado e colorido utilizando o corante de Wright-Giemsa, mas ao observar a lâmina ao microscópio, o técnico nota que as células estão mal coradas. Quais são os possíveis fatores que poderiam ter levado a essa falha e como isso pode ser corrigido?
Itens para Verificação:
1. O tempo de coloração pode ter sido insuficiente, exigindo um tempo maior na solução de coloração.
2. O pH do corante pode estar inadequado, necessitando de verificação e ajuste.
3. A lâmina pode não ter sido fixada corretamente, comprometendo a coloração.
4. O corante pode estar vencido, requerendo substituição.
5. A observação deve ser feita em menor ampliação para ajustar o foco corretamente.
Alternativas:
Durante a observação de um esfregaço sanguíneo ao microscópio óptico, o técnico percebe que a imagem não está focada corretamente, mesmo após vários ajustes. Qual é a sequência de passos que o técnico deve seguir para resolver o problema e obter uma visualização nítida?
Itens para Verificação:
1. Verificar se o microscópio está corretamente alinhado e se todas as lentes estão limpas.
2. Ajustar a iluminação do microscópio para garantir um campo claro.
3. Utilizar a objetiva de menor aumento para localizar a amostra antes de aumentar a ampliação.
4. Ajustar o foco utilizando o parafuso micrométrico, começando pelo ajuste grosso.
5. Caso o problema persista, realizar a manutenção do microscópio, incluindo a verificação das lentes.
Alternativas:
Ao preparar uma solução de NaCl a 0,9% para uso em laboratório, o técnico precisa realizar a diluição correta de uma solução estoque. Qual é a quantidade necessária de solução estoque de NaCl a 10% que deve ser diluída em 1 litro de água destilada para se obter a concentração desejada?
Itens para Verificação:
1. Calcular a quantidade de solução estoque necessária utilizando a fórmula C1V1 = C2V2.
2. Medir exatamente 90 mL de solução estoque para diluir em 910 mL de água destilada.
3. Após a diluição, verificar a homogeneidade da solução antes do uso.
4. Registrar a preparação da solução no livro de registro de soluções laboratoriais.
5. Realizar uma titulação para verificar a concentração exata da solução diluída.
Alternativas:
Durante a limpeza e preparo de vidrarias de laboratório, é fundamental seguir etapas específicas para garantir a esterilidade e evitar contaminações. Qual é a sequência correta de procedimentos a ser adotada para garantir a eficácia da esterilização das vidrarias utilizadas em análises clínicas?
Itens para Verificação:
1. Lavagem com detergente neutro para remover resíduos orgânicos.
2. Enxágue com água destilada para eliminar restos de detergente.
3. Esterilização em autoclave a 121°C por 15 minutos.
4. Secagem em estufa a 180°C por 2 horas para garantir a eliminação de umidade residual.
5. Armazenamento em local limpo e seco, protegido de contaminação ambiental.
Alternativas:
Um técnico de laboratório está utilizando uma pipeta volumétrica para medir um reagente. Durante o procedimento, ele percebe que a pipeta não está dispensando o volume esperado. Quais procedimentos devem ser seguidos para garantir a precisão do volume medido e evitar erros na análise?
Itens para Verificação:
1. Verificar a calibração da pipeta antes de cada uso.
2. Utilizar técnicas adequadas de pipetagem, como evitar o toque da ponta da pipeta nas paredes do recipiente.
3. Conferir a integridade da pipeta para garantir que não haja obstruções ou danos.
4. Realizar uma nova medição utilizando outra pipeta se a primeira apresentar problemas.
5. Descartar a pipeta imediatamente após a identificação do problema, sem necessidade de registro.
Alternativas:
Durante a coleta de sangue venoso para exames laboratoriais, é importante seguir protocolos específicos para garantir a qualidade da amostra. Em um determinado caso, um paciente chega ao laboratório após ingerir alimentos gordurosos. Como essa condição pode interferir na coleta e nos resultados dos exames, e quais são as melhores práticas para garantir a precisão dos resultados?
Itens para Verificação:
1. O jejum é essencial para evitar interferências lipêmicas no soro.
2. A coleta de sangue deve ser adiada, e o paciente instruído a retornar após 12 horas de jejum.
3. Caso a coleta seja realizada, o técnico deve registrar a condição do paciente na ficha de coleta.
4. A lipemia pode interferir nos resultados de testes bioquímicos, como dosagem de colesterol e triglicerídeos.
5. A amostra coletada pode ser processada normalmente, sem necessidade de observações adicionais.
Alternativas:
1. Estufas
2. Capelas
3. Centrífugas
4. Autoclaves
5. Espectrofotômetros
a. Secagem de substância sólida e evaporação lenta de líquidos.
b. Proteção dos usuários do laboratório contra inalação de gases.
c. Separação de fases de uma amostra.
d. Esterilização de vidrarias. e. Medição e comparação da quantidade de luz absorvida por soluções.
Qual correlação é a correta?
1. Gordura
2. Glicogênio
3. Identificação de Glucagon
4. Identificação de DNA
5. Fibras Elásticas
a. Periodic acid–Schiff (PAS)
b. Imunocitoquímica
c. Reação de Feulgen
d. Sudan Black B
e. Aldeído Fucsina
Qual correlação é a correta?
1. Solução
2. Soluto
3. Solvente
4. Concentração
5. Molaridade
a. Substância que se dissolve.
b. Mistura homogênea de duas ou mais substâncias.
c. Número de moles de soluto presentes em um litro de solução.
d. Substância que dissolve o soluto.
e. Quantidade de soluto dissolvida em uma determinada quantidade de solvente.
Qual correlação é a correta?