O emprego de amostras-controle é uma forma de se realizar controle de qualidade.

O controle de qualidade leva em consideração apenas as atividades analíticas realizadas dentro do laboratório.

O sistema dinâmico e complexo do controle de qualidade identifica os erros laboratoriais, não sendo capaz de eliminá-los.

O controle de qualidade em laboratório é algo desnecessário quando se tem equipamentos de qualidade e uma equipe bem treinada.

A calibração de equipamentos corresponde a uma etapa importante das análises laboratoriais, mas que não é exigida para se ter um bom controle de qualidade.

A exposição dos tubos contendo sangue à luz não influencia na determinação de nenhum parâmetro que poderá ser analisado.

A separação do soro ou plasma das células sanguíneas, em geral, é realizada após o período de 2 horas, independente do analito que será quantificado.

Para evitar a hemólise após a coleta, os tubos devem ser mantidos na posição horizontal até a completa coagulação do sangue, quando poderá então ser centrifugado.

A refrigeração da amostra coletada pode ser imprescindível, cuja temperatura de 2 a 8°C é uma das recomendações para alguns casos, pois dessa maneira se promove a inibição do metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis.

As amostras biológicas, quando necessário, devem ser transportadas em recipiente isotérmico, higienizável e permeável, não sendo indicada a utilização de simbologia de risco biológico para assegurar a confidencialidade dos resultados dos pacientes.

O béquer é uma vidraria de grande precisão utilizada no laboratório.

O funil de separação é utilizado na separação de dois líquidos miscíveis.

As vidrarias de laboratório, por serem de vidro, não requerem calibração periódica.

A pipeta de pasteur é utilizada para realizar a transferências de líquidos, sendo fabricada em vidro, possui elevada precisão quando comparada aos outros tipos de pipetas disponíveis.

O erlenmeyer possui um fundo largo e boca afunilada, permitindo agitação de soluções sem que ocorra risco de perda do material que está sendo homogeneizado, sendo bastante utilizado em titulações.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um béquer.

Diluir 20 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em béquer.

Diluir 10 microlitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em uma proveta.

Diluir 20 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

Diluir 10 mililitros da solução de cloreto de sódio a 20g/L e completar o volume com água até 100mL em um balão volumétrico.

A coleta de líquido cefalorraquidiano pode ser realizada por qualquer profissional de saúde de nível superior, por ser de simples execução.

Coleta de amostras de urina para cultura exigem limpeza da região genital, tanto para pacientes do sexo masculino como feminino, devendo ser coletado o primeiro jato da urina.

Durante a realização da coleta de sangue venoso, a alteração da sequência dos tubos de coleta à vácuo não acarreta interferência significativa nos resultados das análises laboratoriais.

As precauções universais sobre coleta de material biológico estabelecem que nem todo material biológico pode ser considerado potencialmente de risco, sendo um exemplo disso coleta de sangue de parentes de primeiro grau.

Na coleta de sangue venoso e/ou arterial, deve-se ter um conhecimento prévio sobre os aditivos e cor das tampas dos tubos de coleta à vácuo, uma vez que cada cor está associada a presença de um anticoagulante específico para determinada análise laboratorial.

O esfregaço sanguíneo pode ser dividido em três regiões: início, meio e fim.

Para a realização da distensão sanguínea é utilizado, preferencialmente, sangue arterial.

A espessura da película formada durante a distensão sanguínea deve aumentar gradativamente no sentido da cabeça para a cauda.

Ângulos superiores a 45° produzem extensões sanguíneas finas e longas, ao passo que ângulos inferiores a 30° produzem extensões espessas e curtas.

A borda lisa da lâmina extensora deve tocar a gota de sangue formando um ângulo de 30 a 45°, permitindo que o sangue se espalhe por toda a região de contato.