A utilização de materiais de referência ou de materiais para controle da qualidade.

O laboratório ter um procedimento para monitorar a validade dos resultados.

Checagens funcionais de equipamentos de medição e ensaio.

Uso de padrões de checagem ou padrões de trabalho com cartas de controle, quando aplicável.

A manutenção de um registro detalhado dos clientes atendidos pelo laboratório.

Apenas I e II.

Apenas III e IV.

Apenas I, II e III.

Apenas I, III e IV.

Apenas II, III e IV.

Cólera, febre tifoide, hepatite A, giardíase, criptosporidiose, amebíase e a esquistossomose são exemplos de doenças de veiculação hídrica.

Essas doenças são mais comuns em países em desenvolvimento, onde as condições de higiene e saneamento básico são precárias

O tratamento adequado do esgoto é uma das formas de prevenção das doenças de veiculação hídrica, assim como o consumo de água potável.

A falta de acesso à água potável e saneamento básico adequado não são fatores que contribuem para o aumento da incidência dessas doenças.

Os sintomas das doenças de veiculação hídrica variam de acordo com a doença, mas geralmente incluem diarreia, náusea e vômito, dor abdominal, dor de cabeça, desidratação e mal-estar geral.

Apenas I e II.

Apenas I e III.

Apenas II e IV.

Apenas I, II e III.

Apenas II, III e IV.

Apenas I e IV.

Apenas II e III.

Apenas III e IV.

Apenas I, II e IV.

I, II, III e IV.

Queima de combustíveis fósseis.

Uso de pesticidas na agricultura.

Descarte de resíduos plásticos.

Plantio de árvores em áreas urbanas.

Construção de edifícios e infraestrutura.

A DBO mede a quantidade de oxigênio consumido por microrganismos para decompor matéria orgânica durante um período de incubação de 5 dias.

A DBO mede a quantidade de oxigênio necessária para oxidar a matéria orgânica presente na água, utilizando dicromato de potássio como agente oxidante.

A DBO e DQO utilizam o mesmo princípio de medir o oxigênio dissolvido inicial e final após um período de 5 dias de incubação a 20°C.

A DQO no fluxo aberto mede a quantidade de oxigênio consumido por microrganismos para decompor matéria orgânica durante 5 dias a 20°C, enquanto DBO no fluxo fechado com micro digestão utiliza dicromato de potássio para oxidar matéria orgânica.

A DBO mede a quantidade de oxigênio consumido por microrganismos para decompor matéria orgânica, utilizando titulação com dicromato de potássio após 2 horas de aquecimento. A DQO, no fluxo fechado com micro digestão, mede a oxidação de matéria orgânica utilizando micro-organismos em um sistema selado.

O comprimento de onda de máxima absorbância independe da variação da concentração da espécie absorvente.

A transmitância é definida como a fração da luz original que passa pela amostra.

A espectrometria de UV-vis utiliza luz com comprimentos de onda entre 160 e 780 nm.

São exemplos de alguns cromóforos alcenos, alcinos, anéis aromáticos e aminas.

A utilização da espectrometria de UV-vis é restrita à determinação de espécies coloridas.

Durante experimentos de titulação, os laboratoristas canhotos devem abrir e fechar a bureta com a mão esquerda e agitar o erlenmeyer com a mão direita.

A utilização de lentes de contato não é segura no laboratório, pois respingos ou qualquer quantidade de solventes orgânicos, ou mesmo corrosivos, podem reagir com o material que as lentes são confeccionadas, causando danos aos olhos.

Bolhas presentes dentro da bureta podem ser mantidas para a realização da titulação.

Em experimentos que envolvam pipetagem, é necessário soprar o restante do líquido que fica na ponta da pipeta para o recipiente.

Tubos de ensaio submetidos ao aquecimento devem estar preenchidos com a amostra até seu limite máximo de volume.

O material dos frascos utilizados para coletar e guardar as amostras deve ser definido em protocolo, pois não deve contaminar ou reagir com as amostras.

Amostras sólidas são sempre homogêneas, assegurando a representatividade do material analisado.

Em amostras com analitos sensíveis ao calor e à luz, o protocolo de amostragem deverá especificar se as amostras devem ser guardadas em temperatura ambiente.

Em corpos receptores de água, a amostragem deve ser feita, unicamente, em local abaixo do ponto de lançamento.

Não é possível realizar amostragem de gases.

Frascos abertos devem ser utilizados para a pesagem de líquidos voláteis.

Deve-se utilizar sempre o maior frasco de pesagem possível.

No momento da pesagem, se houver alguma sujeira sobre o prato da balança, basta zerar a balança e continuar com a pesagem normalmente.

A pesagem pode ser realizada com a portinhola da balança aberta, já que inexistem problemas relacionados à convecção de ar.

Sólidos que são higroscópios devem ser colocados em frascos fechados para a realização da pesagem.

Possibilita a análise de amostras coloridas, turvas ou opacas.

Possibilita a análise apenas de amostras coloridas, não podendo ser utilizada em amostras turvas e opacas.

Emprega indicadores comumente utilizados em laboratórios.

Pode ser utilizada somente em soluções com alta concentração.

O controle sobre a temperatura da solução não é necessário.

Não se deve ingerir alimentos no laboratório.

Nas atividades de laboratório, deve-se utilizar equipamentos de proteção individual, como óculos de proteção, jaleco de algodão e capela de exaustão.

Deve-se utilizar sapatos fechados, calças compridas e jalecos de manga longa.

Para a segurança do laboratorista, solventes orgânicos, ácidos e bases concentrados devem ser manipulados em capela de exaustão.

Os resíduos gerados, sólidos ou líquidos, não podem ser despejados nas pias, sendo necessário armazená-los em recipientes apropriados com a devida identificação.

Ao se gerar resíduos no laboratório, deve-se armazená-los nas bancadas de trabalho em frascos apropriados.

Amostras de reagentes retiradas do frasco original e não utilizadas devem ser devolvidas para o frasco original.

No preparo de soluções aquosas ácidas, deve-se adicionar água destilada à alíquota de ácido.

Após o preparo de uma solução, é necessário transferi-la para um frasco adequado com rótulo que apresente as informações necessárias.

Após lavar as vidrarias volumétricas, estas devem ser secas em estufa a 105ºC durante 60 minutos.

O Siemens (S) é uma Unidade Internacional de Unidades que mede a condutividade elétrica.

Antes de fazer uma medida no condutivímetro é necessário calibrar o equipamento utilizando-se soluções padrões com condutividade conhecida.

Para soluções de baixa condutância (soluções extremamente diluídas), os eletrodos devem ser grandes com uma pequena distância entre eles.

A condutividade elétrica é uma propriedade que depende da presença de íons dissolvidos em soluções iônicas, pois os íons permitem a passagem da corrente elétrica.

A medida da condutividade é sensível apenas a íons inorgânicos de pequeno raio iônico.

3,00 2,00.

4,00 6,00.

4,00 3,00.

8,00 3,00.

4,00 2,00.

A fase gasosa móvel é responsável por transportar os solutos gasosos através de uma coluna que contém a fase estacionária.

A fase móvel líquida é responsável por transportar solutos gasosos em uma coluna que contêm a fase estacionária.

A fase móvel é composta por um gás inerte, normalmente nitrogênio, hélio ou oxigênio.

A fase gasosa transporta solutos líquidos em uma coluna que contêm a fase estacionária.

Compostos não voláteis e termicamente estáveis são ideais para análise por cromatografia gasosa.

A absortividade molar é um parâmetro da Lei de Beer, que não é intrínseco da espécie absorvente.

A Lei de Beer é válida para qualquer faixa de concentração da substância a ser analisada.

A Lei de Beer independe do comprimento do caminho óptico.

Quanto menor for a absortividade molar, menor será a absorbância.

ALlei de Beer sofre desvios em análises que envolvem soluções diluídas.

Um atomizador, um monocromador, uma cubeta e uma chama.

Uma fonte de luz, um monocromador, uma cubeta e um atomizador.

Uma chama, um monocromador, um detector e um processador.

Uma fonte de luz, um difratômetro, um atomizador e um detector.

Uma fonte de luz, um monocromador, uma cubeta e um detector.