Bisturi.

Criostato.

Micrótomo.

Micrótomo rotativo.

Microscópico óptico.

xilol para fixação das amostras biológicas.

anticorpos para averiguar expressão de proteínas.

corantes como eosina, PAS e azul de metileno.

bisturi para realizar clivagem das amostras biológicas.

reagente de Schiff para contracorar o núcleo celular.

O fragmento de parafina deve ser posto em água morna e posteriormente fixado na lâmina de vidro.

A amostra biológica deve ser colocada em formalina após 24 horas da incisão cirúrgica.

Os blocos de parafina devem ser armazenados a 60°C, para conservação.

O congelamento de amostras biológicas para análise histopatológica deve acontecer no freezer a -1°C.

É importante realizar a desidratação iniciando com álcool a 100% até chegar a 70%.

Amostras biológicas biopsiadas de diferentes indivíduos podem ser armazenadas em um mesmo recipiente que contenha a identificação no rótulo.

Os reagentes utilizados para técnicas de coloração podem apresentar contaminação, por isso necessitam de renovação periódica.

Os blocos de parafina podem ser manipulados sem luvas e levados à geladeira para sua conservação.

A bancada utilizada para manipulação da amostra deve ser usada após seu aquecimento através de luz artificial.

A assepsia do chão e das bancadas deve acontecer no período máximo de 7 dias, com os devidos produtos de higienização.

aquecer a parafina a 50°C, para endurecimento.

esfriar a parafina, para garantir a qualidade do bloco.

hidratar a amostra biológica com álcool a 70%.

congelar as amostras, para impregnação com parafina.

clivar as amostras biológicas.

Fixar a amostra biológica na parafina.

Remover gordura normalmente presente na amostra.

Inibir o processo de autólise celular.

Desidratar a amostra biológica.

Modificar a coloração da amostra, para melhor análise.

Os frascos que acondicionam as amostras biológicas devem ter boca larga, boa vedação e pouco fixador.

As amostras biológicas devem ser condicionadas em xilol, em frasco de vidro identificado com lápis ou etiqueta protegida por material plástico.

Após 2 horas embebidas no fixador, as amostras podem seguir para o processamento de rotina.

A amostra deve ficar submersa no líquido fixador por, no mínimo, 24 horas, para melhor fixação do tecido.

Frascos de plástico e de soro fisiológico também são indicados para armazenar amostras biopsiadas.

álcool a 90%.

álcool a 70%.

hipoclorito a 3%.

hipoclorito a 90%.

hipoclorito a 10%.

A desinfecção promove a morte de grande porcentagem dos microrganismos existentes em uma superfície, através do aumento da temperatura.

O uso de hipoclorito a 3% favorece uma regeneração dos microrganismos existentes em objetos e superfícies laboratoriais.

A esterilização é um procedimento que favorece a higienização de superfícies nas quais é realizada a manipulação de amostras biológicas.

A assepsia assegura a limpeza de superfícies contaminadas, com a utilização de álcool a 70%.

A flambagem é utilizada como uma garantia de assepsia de superfícies.

Reativo de Schiff.

Giemsa.

Sudan black.

Azul de toluidina.

Violeta Cresil.

xilol.

formalina a 10%.

formaldeído.

formol.

álcool a 10%.

1 e 2.

1 e 3.

2 e 4.

1, 2 e 4.

1, 3 e 4.

Bequer.

Bastão de vidro.

Proveta.

Tubo falcon.

Erlenmeyer.

1.

1 e 3.

2 e 3.

2 e 4.

4.

hidratação da amostra e secagem.

montagem da lâmina com lamínula e entellan.

uso do entellan para fixação do tecido.

secagem e fixação com lamínula silanizada.

montagem da lâmina com xilol.

Biópsia.

Repique.

Fixação.

Parafinização.

Desidratação.

micrótomo.

micrótomo rotativo.

criostato.

ultramicrótomo.

micrótomo de corrediça.

Desidratação, clarificação e impregnação.

Desidratação, clarificação e parafinização.

Clarificação, fixação e parafinização.

Clarificação, impregnação e fixação.

Fixação, desidratação e impregnação

álcool, de 70 a 100%.

álcool, de 100 a 70%.

xilol e álcool, a 100%.

álcool a 70% e álcool-ácido 1/1.

álcool a 100% e formalina a 10%.

formol.

álcool.

álcool-ácido.

xilol.

formaldeído.