1

1, 2 e 3.

1 e 4.

2, 3 e 4.

4.

formol.

álcool.

álcool-ácido.

xilol.

formaldeído.

álcool, de 70 a 100%.

álcool, de 100 a 70%.

xilol e álcool, a 100%.

álcool a 70% e álcool-ácido 1/1.

álcool a 100% e formalina a 10%.

micrótomo.

micrótomo rotativo.

criostato.

ultramicrótomo.

micrótomo de corrediça.

hidratação da amostra e secagem.

montagem da lâmina com lamínula e entellan.

uso do entellan para fixação do tecido.

secagem e fixação com lamínula silanizada.

montagem da lâmina com xilol.

xilol.

formalina a 10%.

formaldeído.

formol.

álcool a 10%.

Fixar a amostra biológica na parafina.

Remover gordura normalmente presente na amostra.

Inibir o processo de autólise celular.

Desidratar a amostra biológica.

Modificar a coloração da amostra, para melhor análise.

Amostras biológicas biopsiadas de diferentes indivíduos podem ser armazenadas em um mesmo recipiente que contenha a identificação no rótulo.

Os reagentes utilizados para técnicas de coloração podem apresentar contaminação, por isso necessitam de renovação periódica.

Os blocos de parafina podem ser manipulados sem luvas e levados à geladeira para sua conservação.

A bancada utilizada para manipulação da amostra deve ser usada após seu aquecimento através de luz artificial.

A assepsia do chão e das bancadas deve acontecer no período máximo de 7 dias, com os devidos produtos de higienização.

xilol para fixação das amostras biológicas.

anticorpos para averiguar expressão de proteínas.

corantes como eosina, PAS e azul de metileno.

bisturi para realizar clivagem das amostras biológicas.

reagente de Schiff para contracorar o núcleo celular.

Bisturi.

Criostato.

Micrótomo.

Micrótomo rotativo.

Microscópico óptico.

é ideal para fragmentar tecidos grandes e necrosados.

é necessária para economizar reagentes utilizados no preparo histológico.

favorece o aumento de superfície exposta aos corantes de rotina utilizados.

é necessária para diminuir os campos de visão na microscopia de luz.

favorece o aumento da impregnação de substâncias utilizadas no preparo histológico.

1

2 e 4.

1 e 3.

2 e 3.

3 e 4.

Esterilizar superfícies que entraram em contato com amostras biológicas.

Derreter a parafina utilizada na confecção de blocos de parafina.

Distender o fragmento embebido em parafina cortado pelo micrótomo.

Promover aquecimento dos blocos para retirada de cortes histológicos.

Favorecer o processo de clarificação tecidual e fixação.

Ajustar o aumento e o foco da imagem analisada.

Promover a elevação da platina para aproximação da amostra às lentes objetivas.

Realizar a sustentação do revólver.

Promover o aumento da resolução da imagem na objetiva de 100x.

Concentrar a luz e projetar um feixe luminoso sobre a amostra.

averiguar a presença de algum corpo estranho no frasco, como tesoura ou bisturi.

realizar a retirada da amostra biológica e a análise microscópica.

realizar o cadastro da amostra e seguir com a análise macroscópica.

realizar um questionário socioeconômico e cultural com o paciente ou com o responsável.

armazenar a amostra em álcool a 100% para iniciar o processo de desidratação.

São utilizados para determinar o tipo de tecido em que é feita a análise.

São escolhidos por sua afinidade para regiões contidas no compartimento celular.

São ferramentas utilizadas para verificar a qualidade do fixador utilizado na amostra.

São reagentes que podem impedir a degeneração e necrose tecidual.

São direcionadores para o diagnóstico de tumores malignos, como o câncer de mama.

É necessário uso de xilol para clarificar o tecido, seguido da desidratação com álcool

É necessário o uso de álcool para a desidratação e de xilol para a clarificação do tecido.

A durabilidade da lâmina é garantida pela qualidade do xilol e da lamínula utilizada.

O uso do Entellan é necessário para desidratar o tecido e conservá-lo.

É recomendado apenas o uso do Bálsamo do Canadá para conservação do tecido.

micrótomo.

nitrogênio líquido.

criostato.

freezer.

estufa a 25°C.