Resíduos químicos orgânicos. como aqueles que contenham açúcares ou aminoácidos, bem como sais orgânicos e inorgânicos de ocorrência natural, podem ser descartados na rede de esgoto (pia) do laboratório, após diluição em água ou por descarte vagaroso acompanhado de água corrente.

Resíduos químicos constituídos por metais pesados podem ser descartados na rede de esgoto (pia) do laboratório, após realização de procedimento de tratamento destes resíduos.

Considerando-se os conhecimentos sobre incompatibilidade química, a melhor forma de neutralização de ácido sulfúrico para descarte é a sua dissolução em água.

Em se tratando de resíduos químicos corrosivos (soluções aquosas de ácidos ou bases, com valor de pH entre 5<x<9) para o descarte na rede de esgoto basta realizar sua dissolução em água corrente já na pia.

Considerando-se os conhecimentos sobre incompatibilidade química e neutralização, nunca é possível recuperar resíduos químicos para reuso.

O uso de um Corante aniónico em pH 2,5 serviria para o objetivo da aula, haja vista que neste pH as moléculas do corante carregadas positivamente, e os ácidos nucleicos, carregados negativamente, se associaram por meio de ligações eletrostáticas.

Ouso de um corante aniónico em pH 8,1 serviria para o objetivo da aula, haja vista que neste pH as moléculas do corante, carregadas negativamente, e os ácidos nucleicos, carregados positivamente, se associaram por meio de ligações eletrostáticas.

O uso de um corante catiónico em pH 4 serviria para o objetivo da aula, haja vista que neste pH as moléculas do corante, carregadas positivamente, e os ácidos nucleicos, carregados negativamente, se associaram por meio de ligações eletrostáticas.

O uso de um corante catiónico em pH 4 serviria para o objetivo da aula, haja vista que neste pH as moléculas do corante, carregadas negativamente, e os ácidos nucleicos, também carregados negativamente, se associariam por meio de ligações covalentes.

O uso de um corante catiónico em pH 4 serviria para o Objetivo da aula, haja vista que neste pH as moléculas do corante ,carregadas negativamente, e Os ácidos nucleicos, carregados positivamente, se associariam por meio de ligações eletrostáticas.

Sangue de serpente deve ser submetido à técnica de esmagamento, de modo a se espalharem as células em fina camada. Após isso, o material deve ser submetido ao fixador de Carnoy (mistura de etanol e ácido acético) e corado pelo método da reação de Feulgen para evidenciação de seus núcleos.

Segmentos do intestino delgado de camundongos devem ser fixados em agentes fixadores à base de formaldeído, desidratados em xilol, clarificados em série crescente de álcool, infiltrados e embiocados em parafina e submetidos à microtomia, previamente à Sua coloração

Segmento do intestino delgado de camundongos podem ser submetidos à técnica de montagem total, haja vista tratar-se de órgão fino. Após isso, o material deve ser submetido ao fixador de Carnoy (mistura de etanol e ácido acético) e depois à coloração por Hematoxilina-Eosina (HE).

Decalques de porção de fígado murino (lavado em solução salina e secado em papel de filtro), devem ser submetidos ao fixador de Carnoy (mistura de etanol e ácido acético) e corados pelo método da reação de Feulgen para evidenciação de seus núcleos e verificação do estado de compactação da cromatina.

Uma porção de fígado murino (lavado em solução salina e secado em papel de filtro) pode ser submetida à técnica de esfregaço, de modo a se disporem as células em fina camada, que será fixada em agentes fixadores à base de formaldeído, previamente à sua coloração.

somente 1, 2 e 4.

apenas 2 e 3.

apenas 1, 3 e 4.

somente 1 e 4.

apenas 2 e 4.

Pera de sucção

Bico de Bunsen

Pisseta

Mufla

Béquer

Nunca mover a pipeta da posição vertical quando estiver com líquido no interior da ponteira.

Manter a pipeta na posição vertical e efetuar a aspiração do líquido lentamente, dando uma pausa de uma fração de segundos após a aspiração.

A qualidade das ponteiras não influencia na precisão da pipetagem.

Após o uso, as pipetas devem ser mantidas na posição vertical em estantes apropriadas.

A precisão da pipetagem é afetada pelo adequado esvaziamento da ponteira pela pressão de ar.

FAA

Formaldeído

Trioximetileno

Paraformaldeído

Metacrilato de metila

Quando em funcionamento, manter o vidro da frente da capela de exaustão de gases fechado, permitindo apenas a passagem dos braços do manipulador.

Jamais remover o vidro da capela de exaustão de gases, uma vez que estes influenciam decisivamente o sistema de exaustão.

Armazenar vidrarias ou substâncias químicas em seu interior.

Não permitir a instalação de tomadas elétricas no interior da capela.

A avaliação técnica especializada da capela de exaustão deve ser feita periodicamente.

Dar preferência em estocar grandes quantidades de produtos químicos, em vez de estocar pequenas quantidades, e evitar, assim, a falta dos mesmos quando necessário.

Usar uniformes longos e fechados na frente, protegendo braços e pernas.

Ler atentamente o rótulo antes de abrir qualquer embalagem de produto químico.

Não armazenar nenhum produto químico em frasco de metal.

Se durante a limpeza ocorrer um acidente com derramamento de substância química, alertar imediatamente o técnico de segurança da unidade.

pipeta automática e proveta

erlenmeyer e kitassato.

balão volumétrico e bureta.

pisseta e coluna cromatográfica.

funil de decantação e funil de Büchner.

O composto em contato com a pele deve ser lavado abundantemente com água corrente.

O composto em contato com a pele deve ser absorvido por meio de serragem, estopas, pedaços de pano ou outro material orgânico.

O composto em contato com a pele deve ser neutralizado utilizando-se um ácido fraco.

O composto em contato com a pele deve ser neutralizado, utilizando-se uma base fraca.

O composto em contato com a pele deve ser neutralizado, utilizando-se uma substância detergente, como triton X100.

Remover resíduos de muco e sangue das amostras.

Diafanizar os tecidos para melhor visualização na microscopia óptica.

Promover interações acidófilas no núcleo celular.

Interagir com glicoproteínas para visualização de mucinas ácidas ou neutras, dependendo do protocolo.

Promover a descalcificação de tecidos duros.

é utilizado como fluoróforo na microscopia de fluorescência.

é um excelente tampão; entretanto, devido à raridade do Ósmio, seu preço é caro.

apresenta ação fixadora e é um contrastante utilizado em microscopia eletrônica.

é uma substância laboratorial que apresenta baixo risco.

serve para corar apenas as estruturas com escala de 2 a 100𝑛𝑚.

Coleta de amostra o mais rápido possível, para evitar apoptose das células.

Coleta com pouca iluminação, para evitar a oxidação das amostras.

Coletar o material com sucessivas lavagens em álcool 70%, para evitar ocorrência de fungos e bactérias.

Utilização de um fixador tamponado que seja adequado para o tipo de análise posterior.

Empregar um corante histológico durante a coleta e fixação do material.

EDTA

Etilenoglicol

Formaldeido

Glutaraldeído

Solução de Bouin

Máscara de proteção

Óculos de segurança

Protetores auriculares

Luvas cirúrgicas

Jaleco

18,8g

9,4g

28,3g.

4,7g.

36,4g.

As alternativas I, II e IV estão corretas.

As alternativas I, II e III estão corretas.

Todas as alternativas estão corretas.

As alternativas II, III e IV estão corretas.

1-A, 2-D, 3-C e 4-B.

1-D, 2-C, 3-A e 4-B.

1-B, 2-A, 3-D e 4-C.

1-C, 2-B, 3-A e 4-D.

As amostras controle não necessitam ser analisadas da mesma forma que as amostras dos pacientes.

O laudo emitido pelo laboratório de apoio deve estar disponível e arquivado pelo prazo de 5 (cinco) anos.

O laboratório clínico e o posto de coleta laboratorial devem dispor de instruções escritas e atualizadas das rotinas técnicas implantadas.

O reagente ou insumo preparado pelo próprio laboratório deve ser identificado com rótulo contendo: nome, concentração, número do lote (se aplicável), data de preparação, identificação de quem preparou (quando aplicável), data de validade, condições de armazenamento, além de informações referentes a riscos potenciais.