as quantidades de amostras de materiais e produtos retidos devem ser sufi cientes para possibilitar que sejam realizadas, pelo menos, três análises completas.

as amostras retidas de cada lote de produto terminado devem ser mantidas por, pelo menos, 12 (doze) meses após o vencimento, exceto para Soluções Parenterais de Grande Volume (SPGV), que devem ser conservadas por, no mínimo, 30 (trinta) dias após o vencimento.

se o produto for embalado em embalagens grandes, excepcionalmente as amostras podem ser guardadas em recipientes menores com as mesmas características e armazenadas sob as condições recomendadas.

as amostras de substâncias ativas devem ser retidas por, pelo menos, um ano após o vencimento dos prazos de validade dos produtos finais aos quais tenham dado origem.

as amostras de outras matérias-primas (excipientes), exceto solventes, gases e água, devem ser retidas pelo período mínimo de dois anos após seu respectivo prazo de validade, se assim permitirem os respectivos estudos de estabilidade efetuados pelo fabricante da matéria-prima.

borato de magnésio, sulfato de amônio e ácido cítrico.

cloreto de metileno, ácido pícrico e xilol.

ácido lático, acetato de cálcio e brometo de potássio.

fosfato de amônio, brometo de sódio e acetato de potássio.

óxido de alumínio, ácido lático e bicarbonato de potássio.

Ágar Sabouraud.

Ágar sangue.

Ágar chocolate.

Ágar MacConkey.

Ágar bílis-esculina.

Espécies de leveduras.

Streptococcus spp. e Staphylococcus spp.

Proteusmirabilis e Escherichia coli.

Espécies de Salmonella.

Escherichia coli e Staphylococcus aureus.

As análises devem sempre ser feitas com luvas.

Evite respingos ou formação de aerossóis quando manusear amostras de urina.

As amostras nunca devem ser centrifugadas sem tampas.

O descarte da urina pode ser feito na pia, jogando-se depois grande quantidade de água.

O recipiente em que a amostra ficou estocada deve ser descartado em caixas do tipo Descarpack.

Autoclave; balança, destilador.

Estufa bacteriológica, tubo de Durhan, algodão em rama.

Balança, meios de cultura, tubo de ensaio.

Jar Test, mufla, pHmetro.

Placas de Petri, lâmpada ultravioleta, contador de colônia.

As micropipetas são instrumentos de laboratório utilizados para transferência, com precisão, de pequenos volumes.

Podemos pipetar líquidos não infectantes utilizando a boca, sem a necessidade do uso de dispositivos
de auxílio.

Após seu uso, devemos guardar as pipetas automáticas calibradas em seu maior valor de faixa de variação de volume.

Ao utilizar pipetas automáticas, deve-se retirar o excesso de líquido externo com gaze ou papel absorvente.

5%.

25%.

250%.

1.250 microlitros.

125 microlitros.

12.500 microlitros.

12,5 microlitros.

Solicitação do exame.

Orientação sobre a coleta.

Armazenamento da amostra do paciente.

Cadastramento da amostra.

Jalecos.

Extintor de incêndio.

Luvas.

a infecção pelo parasito é restrita aos países com piores condições sociais e econômicas.

o homem é considerado hospedeiro definitivo; e o gato é o hospedeiro intermediário do parasito.

a maioria dos casos de toxoplasmose é sintomática, sendo a ocorrência de febre, náuseas e vômitos os sintomas clínicos mais comuns da doença.

as formas infectantes do parasito são taquizoítos, bradizoítos e esporozoítos.

exame de sangue em gota espessa.

esfregaço sanguíneo corado por Giemsa.

método de Strout.

 xenodiagnóstico.

a maioria dos casos da doença é assintomática, porém, quando sintomática, a diarreia do tipo aquosa e explosiva é um sintoma clínico característico.

o ciclo biológico do parasita Giardia lamblia é do tipo heteroxeno

na coleta de uma amostra fecal em fezes diarreicas.um paciente desenvolvendo giardíase elimina cistos continuamente nas fezes, que são detectados

os cistos possuem formato de pêra, simetria bilateral e quatro pares de flagelos.

pela picada do vetor transmissor.

por meio de água e alimentos contaminados.

pelo uso de drogas injetáveis.

por meio de transfusões sanguíneas.

Leishmania chagasi.

Leishmania tropica.

Leishmania donovani.

Leishmania infantum.

quanto maior o ângulo formado entre as lâminas distensora e extensora, menor deverá ser o tamanho do filme sanguíneo.

os métodos de may-grünwald-giemsa, Wright e Leishmann podem ser utilizados na coloração de filmes sanguíneos.

um campo microscópico considerado ideal para a contagem diferencial de leucócitos é aquele no qual há sobreposição eritrocitária, mas não há condensação de leucócitos.

quanto menor a quantidade de sangue usada no esfregaço, mais fino deverá ficar o filme sanguíneo.

eliptócitos.

codócitos.

equinócitos.

esquisócitos.

hemácias de indivíduos do grupo B reagem com soro anti-B.

hemácias de indivíduos do grupo a reagem com soro anti-B.

hemácias de indivíduos do grupo o reagem com soros anti-a e anti-B.

hemácias de indivíduos do grupo aB não reagem com soro anti-A.