O tempo de sangramento, que pode ser medido pelo método de Duke, avalia o tempo durante o qual marcas de sangue são deixadas em um papel de filtro.

O tempo de protrombina é alterado por deficiência nos fatores XII e XI.

O tempo de trombina mede a velocidade de coagulação do sangue após a retirada da trombina por cromatografia.

O tempo de tromboplastina parcial ativada avalia apenas os fatores da via extrínseca da coagulação.

A heparina inibe diretamente o fator XII. Portanto, o acompanhamento de seu efeito anticoagulante somente pode ser realizado por meio da dosagem desse fator.

O TOTG é realizado por meio da ingestão de 75 mg de glicose, seguida de dosagens enzimáticas de AST e ALT.

O TOTG não deve ser realizado em gestantes, devido aos riscos para o feto.

Para a realização do TOTG, é correto administrarem-se 75 g ou 100 g de glicose e realizarem-se dosagens de glicose até 2 ou 3 horas após a ingestão.

Durante a realização do TOTG, as dosagens de glicose são feitas por meio de imunoensaio.

Diversos testes laboratoriais para diagnóstico de infecção por HIV detectam a presença de lipídios do envelope viral.

Testes de ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) pesquisam anticorpos anti-HIV circulantes.

O método que utiliza fluorescência para diagnóstico de infecção por HIV detecta enzimas virais.

Um paciente portador de infecção assintomática por HIV pode receber diagnóstico por meio de testes laboratoriais que dosam a atividade da transcriptase reversa livre no plasma.

O método de detecção do HIV por PCR (polymerase chain reaction), apesar de usado para o diagnóstico, não serve para a quantificação da carga viral.

Freqüentemente, observa-se aumento de hemoglobina e de hematócrito durante a manifestação de rash cutâneo.

Devido à etiologia infecciosa da doença, é característica a presença de leucocitose.

Se for detectada uma concentração aumentada de anticorpos anti-DNA, outros testes podem ser dispensados, uma vez que esse teste é suficiente para firmar o diagnóstico de LES.

Nos exames de urinálise, pode ser observada proteinúria acima de 0,01 g/dia e(ou) cilindros mistos.

Freqüentemente, pacientes com LES apresentam resultados falsos-negativos em testes sorológicos para sífilis.

A dosagem de insulina é realizada pelo método da glicose oxidase.

O estrógeno, hormônio constituído por proteínas, é dosado pelo método do biureto.

O hormônio TSH, sintetizado pela tireóide, é dosado rotineiramente, em laboratórios de análises clínicas, por espectrometria de massa.

A dosagem do hormônio pepsina sofre influência do uso de inibidores da secreção ácida gástrica.

Em um mesmo indivíduo, espera-se encontrar concentração maior de insulina após as refeições que antes delas.

Os componentes para essa solução devem, obrigatoriamente, ser esterilizados antes do preparo da mesma, pois não há meios de esterilização que mantenham inalteradas as características bioquímicas dessa solução.

Para o correto preparo da solução, devem ser adicionados 39,6 g de asparagina e 53,4 g de alanina a 1 L de água.

O procedimento correto de preparo da solução consiste na adição dos solutos a um volume de solvente menor que o volume final e na medição precisa do volume final da solução em balão volumétrico.

A solução de asparagina e a solução de alanina devem ser preparadas separadamente e somente misturadas ao final, para que não sofram polimerização.

O solvente a ser utilizado deve ser etanol e não, água, para se evitar a contaminação da solução.

Caso seja necessário favorecer a proliferação de todos os microrganismos presentes na amostra, é correto utilizar-se um meio de cultura seletivo.

O ágar-sangue é um meio de enriquecimento freqüentemente utilizado para a cultura.

Se for necessária a obtenção de colônias puras, a partir de unidades formadoras de colônias, devem-se usar somente meios de cultura líquidos.

O controle de qualidade de meios de cultura feito pela incubação do meio sem a adição intencional de microrganismos é suficiente para a avaliação tanto de resultados falsos-positivos quanto de falsos-negativos.

O meio ágar chocolate apresenta, em sua composição, predominantemente lipídios, o que favorece o crescimento de microrganismos Gram positivos.

O material coletado por punção não é adequado à cultura de microrganismos, cujo crescimento é inviabilizado pela pressão a que o material é submetido durante a aspiração.

A desinfecção com álcool 70% é suficiente para se preparar o material a ser utilizado para armazenamento do líquido coletado.

Após a coleta do material, o tubo deve ser esterilizado em chama de bico de Bunsen.

A coleta de material da cavidade pleural para bacterioscopia deve ser feita em seringa e tubo heparinizados, para que o sangue normalmente presente nesse espaço não prejudique a análise.

Uma das possíveis formas de se preparar o material a ser utilizado para a coleta é a esterilização por raios gama.

Os índices hematimétricos são usados para o diagnóstico de processos infecciosos agudos, portanto não se espera que esses índices estejam alterados no paciente mencionado.

Se, nesse paciente, o hematócrito estiver diminuído em relação ao valor normal e a contagem de eritrócitos estiver aumentada, o VCM estará aumentado.

A redução no valor do hematócrito leva à redução do valor da CHCM, independentemente da concentração de hemoglobina.

Espera-se encontrar contagem de reticulócitos muito reduzida no paciente mencionado.

No referido paciente, espera-se encontrar redução da concentração de hemoglobina e do hematócrito.

Para se preparar um teste que avalie a atividade de gamaglutamil- trasferase, é suficiente colocar o plasma do paciente em contato com gama-glutamil-p-nitroanilina e fazer uma única medida de absorbância.

Se o tampão TRIS disponível estiver na concentração de 1 mol/L, devem-se adicionar 185 mL desse tampão a 815 mL de água para se obter a concentração correta, desde que a densidade do tampão seja igual à da água.

Na situação mencionada, não são necessárias repetições da dosagem para validação estatística, pois não se trata de um estudo epidemiológico.

Deve ser feita uma curva de calibração realizando-se dosagens fotométricas de gama-glutamil-p-nitroanilina.

Caso o tampão preparado esteja em pH = 8,75, deve-se adicionar uma pequena quantidade de base para alcalinizar a solução até se obter o pH desejado.